| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-45页 |
| ·前言 | 第11-14页 |
| ·甲壳动物的免疫机制 | 第14-23页 |
| ·屏障作用 | 第15页 |
| ·滤过作用 | 第15-16页 |
| ·细胞免疫 | 第16-19页 |
| ·体液免疫 | 第19-23页 |
| ·活性氧及生物免疫系统中主要的抗氧化酶类 | 第23-43页 |
| ·正常生理代谢中活性氧的产生 | 第23-25页 |
| ·免疫压力下活性氧的大量产生、作用及消除 | 第25-28页 |
| ·甲壳动物免疫压力下活性氧的产生和危害 | 第28-29页 |
| ·生物免疫系统中主要的抗氧化酶类 | 第29-43页 |
| ·研究展望 | 第43-44页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第44-45页 |
| 第二章 中国明对虾两种超氧化物歧化酶基因的克隆和表达分析 | 第45-76页 |
| ·材料与方法 | 第47-61页 |
| ·实验材料 | 第47-50页 |
| ·实验方法 | 第50-61页 |
| ·结果 | 第61-72页 |
| ·总RNA 提取及检测 | 第61页 |
| ·m MnSOD 和cMnSOD 基因的序列分析及推导氨基酸序列分析 | 第61-63页 |
| ·中国明对虾MnSOD 与其他甲壳动物MnSOD 的多序列比对分析 | 第63页 |
| ·中国明对虾MnSOD 与其他物种SOD 的系统进化树分析 | 第63-67页 |
| ·中国明对虾m MnSOD 和cMnSOD 基因m RNA 的组织分布 | 第67-68页 |
| ·中国明对虾感染WSSV 后mMnSOD 和cMnSOD 基因的表达变化 | 第68-72页 |
| ·讨论 | 第72-76页 |
| 第三章 中国明对虾m MnSOD 基因的重组表达和分离纯化 | 第76-90页 |
| ·材料与方法 | 第77-84页 |
| ·实验材料 | 第77-79页 |
| ·实验方法 | 第79-84页 |
| ·结果 | 第84-88页 |
| ·m MnSOD 基因的重组表达 | 第84页 |
| ·重组m MnSOD 蛋白的质谱鉴定 | 第84-85页 |
| ·重组表达条件的优化及扩大培养 | 第85页 |
| ·重组m MnSOD 蛋白的纯化 | 第85-88页 |
| ·重组m MnSOD 蛋白的复性及酶活测定 | 第88页 |
| ·讨论 | 第88-90页 |
| 第四章 中国明对虾过氧化氢酶基因部分片段的克隆和表达特征分析 | 第90-108页 |
| ·材料与方法 | 第91-96页 |
| ·实验材料 | 第91-92页 |
| ·实验方法 | 第92-96页 |
| ·结果 | 第96-104页 |
| ·CAT 基因的序列分析及推导氨基酸序列分析 | 第96-97页 |
| ·中国明对虾CAT 与其他物种CAT 的多序列比对分析 | 第97页 |
| ·中国明对虾CAT 基因mRNA 的组织分布 | 第97-102页 |
| ·中国明对虾感染WSSV 后CAT 基因的表达变化 | 第102-104页 |
| ·讨论 | 第104-108页 |
| 第五章 中国明对虾过氧化物还原酶基因的克隆、表达及重组蛋白活性分析 | 第108-132页 |
| ·材料与方法 | 第110-117页 |
| ·实验材料 | 第110-111页 |
| ·实验方法 | 第111-117页 |
| ·结果 | 第117-127页 |
| ·Prx 基因的序列分析及推导氨基酸序列分析 | 第117页 |
| ·中国明对虾Prx 与其他物种Prx 的多序列比对分析 | 第117-118页 |
| ·中国明对虾Prx 与其他物种Prx 的系统进化树分析 | 第118-120页 |
| ·中国明对虾Prx 基因mRNA 的组织分布 | 第120-121页 |
| ·中国明对虾感染弧菌后Prx 基因的表达变化 | 第121-122页 |
| ·Prx 基因的重组表达 | 第122-123页 |
| ·重组Prx 蛋白的质谱鉴定 | 第123-125页 |
| ·重组Prx 蛋白的分离纯化 | 第125-126页 |
| ·重组Prx 蛋白的复性及酶活测定 | 第126-127页 |
| ·讨论 | 第127-132页 |
| 结论 | 第132-133页 |
| 参考文献 | 第133-155页 |
| 博士期间发表的文章 | 第155-156页 |
| 致谢 | 第156-157页 |
