| 中文摘要 | 第1-3页 |
| SUMMARY | 第3-8页 |
| 词汇缩略表 | 第8-9页 |
| 前言 | 第9-11页 |
| 第一章 苜蓿霜霉病及植物系统诱导抗性研究进展（文献综述） | 第11-30页 |
| 1 苜蓿霜霉病的病原学 | 第11页 |
| 2 发生规律和防治 | 第11-13页 |
| ·侵染循环 | 第11页 |
| ·发病条件 | 第11-12页 |
| ·发病特征 | 第12页 |
| ·防治措施 | 第12页 |
| ·目前防治中存在的问题 | 第12-13页 |
| ·诱导抗性防治苜蓿病害 | 第13页 |
| 3 植物诱导抗病性的定义及其发展 | 第13-15页 |
| 4. 植物诱导抗病性的诱导因子 | 第15-19页 |
| ·生物因子 | 第15-16页 |
| ·病原物的非亲和小种株系 | 第15页 |
| ·病原菌的弱毒株系 | 第15页 |
| ·生物源激发子 | 第15-16页 |
| ·非生物因子 | 第16-19页 |
| ·物理因素 | 第16-17页 |
| ·化学因素 | 第17-19页 |
| 5. 植物诱导抗病性的特征 | 第19-20页 |
| ·系统性 | 第19页 |
| ·滞后性 | 第19-20页 |
| ·非特异性 | 第20页 |
| ·不完全性 | 第20页 |
| ·安全性 | 第20页 |
| 6. 植物诱导抗病性的机理 | 第20-28页 |
| ·植物防卫反应 | 第21-22页 |
| ·过敏反应 | 第21页 |
| ·植物保卫素的合成和累积 | 第21页 |
| ·抑制病原物降解酶的蛋白质抑制剂的合成 | 第21页 |
| ·细胞壁修饰作用 | 第21-22页 |
| ·植物病程相关蛋白（Pathogensis-related proteins，简称 PRs） | 第22-24页 |
| ·PRs 的生物化学特性 | 第22页 |
| ·PRs 主要基因家族 | 第22-24页 |
| ·防御酶系变化 | 第24-25页 |
| ·过氧化物酶（peroxidase, POD） | 第24页 |
| ·过氧化氢酶（polyphenoloxidase ，CAT)） | 第24-25页 |
| ·超氧化物歧化酶(Superoxide dismutase, SOD) | 第25页 |
| ·苯丙氨酸解氨酶(Phenylalanine ammonia，PAL) | 第25页 |
| ·几丁质酶(Cht)和β-1, 3-葡聚糖酶(Glu) | 第25页 |
| ·诱导抗病性的分子机制 | 第25-28页 |
| ·信号识别 | 第26页 |
| ·信号传导 | 第26-28页 |
| 7 诱导抗性技术展望 | 第28-30页 |
| ·构建不同类型诱抗剂筛选技术体系及安全评价体系 | 第28页 |
| ·诱导抗性相关基因表达的调控机制 | 第28页 |
| ·一步研究方设想 | 第28-30页 |
| 第二章 SA 诱导苜蓿抗霜霉病的测定 | 第30-37页 |
| 1 材料与方法 | 第30-32页 |
| ·供试材料 | 第30页 |
| ·供试植株培养 | 第30页 |
| ·试验处理 | 第30页 |
| ·病原菌接种方法 | 第30页 |
| ·SA 诱导苜蓿抗病性的初步测定 | 第30-31页 |
| ·SA 诱导苜蓿对霜霉病产生抗性的间隔期测定 | 第31页 |
| ·SA 诱导苜蓿对霜酶病产生抗性的最佳浓度测定 | 第31页 |
| ·SA 对苜蓿白粉病菌的抑菌活性测定 | 第31页 |
| ·病害调查 | 第31-32页 |
| 2 结果分析 | 第32-35页 |
| ·SA 诱导苜蓿抗病性的初步测定 | 第32页 |
| ·SA 诱导苜蓿对霜霉病产生抗性的间隔期测定 | 第32-33页 |
| ·SA 诱导苜蓿对霜酶病产生抗性的最佳浓度测定 | 第33-34页 |
| ·SA 对苜蓿白粉病菌的抑菌活性测定 | 第34-35页 |
| 3 小结 | 第35-37页 |
| ·SA 诱导苜蓿抗病性的初步测定 | 第35页 |
| ·SA 诱导苜蓿对霜霉病产生抗性的间隔期测定 | 第35页 |
| ·SA 诱导苜蓿对霜霉病产生抗性的最佳浓度测定 | 第35-36页 |
| ·SA 对苜蓿霜霉病菌的抑菌活性测定 | 第36-37页 |
| 第三章 SA 诱导苜蓿抗霜霉病的抗性相关酶活性测定 | 第37-49页 |
| 1 材料与方法 | 第37-40页 |
| ·材料 | 第37页 |
| ·方法 | 第37-40页 |
| ·苜蓿幼苗处理方法 | 第37页 |
| ·苯丙氨酸解氨酶酶(PAL)活性的测定 | 第37-38页 |
| ·过氧化物酶(POD)活性的测定 | 第38页 |
| ·超氧化物歧化酶（SOD）活性测定 | 第38-39页 |
| ·过氧化氢酶（CAT）活性测定 | 第39页 |
| ·β-1，3-葡聚糖酶活性测定 | 第39-40页 |
| 2 结果分析 | 第40-46页 |
| ·苯丙氨酸解氨酶(PAL)活性变化 | 第40-41页 |
| ·SA 处理未接种霜霉菌苜蓿叶片PAL 酶活性变化 | 第40-41页 |
| ·SA 处理并接种霜霉菌后苜蓿叶片PAL 酶活性变化 | 第41页 |
| ·过氧化物酶(POD)活性变化 | 第41-43页 |
| ·SA 处理未接种霜酶菌后苜蓿叶片POD 酶活性变化 | 第41-42页 |
| ·SA 处理并接种霜霉菌后苜蓿叶片POD 酶活性变化 | 第42-43页 |
| ·超氧化物歧化酶（SOD）活性变化 | 第43-44页 |
| ·SA 处理未接种霜霉菌后苜蓿叶片SOD 酶活性变化 | 第43页 |
| ·SA 处理并接种霜霉菌后苜蓿叶片SOD 酶活性变化 | 第43-44页 |
| ·过氧化氢酶（CAT）活性变化 | 第44-45页 |
| ·SA 处理未接种霜霉菌后苜蓿叶片SOD 酶活性变化 | 第44页 |
| ·SA 处理并接种霜霉菌后苜蓿叶片CAT 酶活性变化 | 第44-45页 |
| ·β-1，3-葡聚糖酶活性变化 | 第45-46页 |
| ·SA 处理未接种霜霉菌后苜蓿叶片β-1，3-葡聚糖酶活性变化 | 第45-46页 |
| ·SA 处理并接种霜霉菌后苜蓿叶片β-1，3-葡聚糖酶活性变化 | 第46页 |
| 3 讨论 | 第46-49页 |
| ·SA 诱导处理后PAL 酶活性变化规律 | 第47页 |
| ·SA 诱导处理后POD 酶活性变化规律 | 第47页 |
| ·SA 诱导处理后SOD 酶活性变化规律 | 第47-48页 |
| ·SA 诱导处理后CAT 酶活性变化规律 | 第48页 |
| ·SA 诱导处理后β-1，3-葡聚酶活性变化规律 | 第48-49页 |
| 第4章 苜蓿经SA 诱导后体内过氧化物同工酶、超氧化物歧化物同工酶分析 | 第49-55页 |
| 1 材料与方法 | 第49-52页 |
| ·材料 | 第49-50页 |
| ·供试植物材料 | 第49页 |
| ·主要供试药剂配置 | 第49-50页 |
| ·试验方法 | 第50-52页 |
| ·聚丙烯胺凝胶配方 | 第50页 |
| ·样品处理 | 第50-51页 |
| ·电泳 | 第51页 |
| ·染色 | 第51-52页 |
| ·迁移率计算 | 第52页 |
| 2 结果分析 | 第52-54页 |
| 3 讨论 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-61页 |
| 作 者 简 介 | 第61-62页 |
| 导 师 简 介 | 第62-66页 |
