| 摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-18页 |
| 第1章 人源性BDNF基因的获取及其生物学活性检测 | 第18-32页 |
| 1．1 引言 | 第18-19页 |
| 1．2 材料与方法 | 第19-22页 |
| 1．2．1 实验材料 | 第19页 |
| 1．2．2 实验方法 | 第19-22页 |
| 1．3 结果 | 第22-26页 |
| 1．3．1 PBDNF—IRES2—EGFP载体及MSCV-BDNF-IRES2-EGFP重组逆转录病毒表达载体的构建及鉴定 | 第22页 |
| 1．3．2 RT—PCR检测转基因C17．2的BDNF—mRNA | 第22页 |
| 1．3．3 ELISA检测BDNF蛋白质表达 | 第22-23页 |
| 1．3．4 免疫细胞化学鉴定 | 第23-26页 |
| 1．4 讨论 | 第26-30页 |
| 1．5 参考文献 | 第30-32页 |
| 第2章 TAT—BDNF融合蛋白的生物合成及其生物特性鉴定 | 第32-51页 |
| 2．1 引言 | 第32页 |
| 2．2 材料与方法 | 第32-38页 |
| 2．2．1 实验材料 | 第32-33页 |
| 2．2．2 实验方法 | 第33-38页 |
| 2．3 结果 | 第38-45页 |
| 2．3．1 pTAT-HA-BDNF重组质粒的构建 | 第38-39页 |
| 2．3．2 TAT—BDNF融合蛋白的生物合成 | 第39-41页 |
| 2．3．3 TAT—BDNF融合蛋白的生物特性检测 | 第41-45页 |
| 2．4 讨论 | 第45-49页 |
| 2．5 参考文献 | 第49-51页 |
| 第3章 TAT—BDNF对体外培养的胚胎干细胞分化的影响 | 第51-64页 |
| 3．1 引言 | 第51页 |
| 3．2 材料与方法 | 第51-55页 |
| 3．2．1 实验材料 | 第51-52页 |
| 3．2．2 实验方法 | 第52-55页 |
| 3．3 结果 | 第55-59页 |
| 3．3．1 E14胚胎干细胞系的培养 | 第55页 |
| 3．3．2 胚胎干细胞的诱导分化 | 第55-59页 |
| 3．4 讨论 | 第59-62页 |
| 3．5 参考文献 | 第62-64页 |
| 第4章 TAT—BDNF对大鼠急性脊髓损伤的神经保护作用 | 第64-79页 |
| 4．1 引言 | 第64-65页 |
| 4．2 材料与方法 | 第65-67页 |
| 4．2．1 实验材料 | 第65页 |
| 4．2．2 实验方法 | 第65-67页 |
| 4．3 结果 | 第67-71页 |
| 4．3．1 TAT—BDNF融合蛋白的体内转导 | 第67-69页 |
| 4．3．2 TAT—BDNF对于大鼠急性脊髓损伤的保护作用 | 第69-71页 |
| 4．4 讨论 | 第71-75页 |
| 4．5 参考文献 | 第75-79页 |
| 综述 | 第79-115页 |
| 脊髓损伤后神经功能修复的研究进展 | 第79-115页 |
| 攻读学位期间成果 | 第115-116页 |
| 附录 | 第116-122页 |
| 1．英文缩写词表 | 第116-118页 |
| 2．主要实验材料 | 第118-119页 |
| 3．pTAT-HA-BDNF重组质粒的测序序列与GENEBANK比照结果 | 第119-122页 |
| 致谢 | 第122-123页 |
| 原创声明、论文授权书 | 第123页 |
