| 第一章 文献综述 | 第1-51页 |
| ·引言 | 第14-15页 |
| ·中药研究概况 | 第15-20页 |
| ·国内外中药研究现状与发展动态 | 第15-17页 |
| ·现代中药的研究模式 | 第17-19页 |
| ·中药研究中存在的问题 | 第19-20页 |
| ·高效液相色谱（HPLC）及其联用技术在中药化学表征中的应用 | 第20-23页 |
| ·高效液相色谱 | 第20-21页 |
| ·LC-MS 联用技术 | 第21-23页 |
| ·药物筛选模型和技术在中药活性成分研究中的应用 | 第23-28页 |
| ·整体动物筛选模型 | 第24页 |
| ·受体、酶等生物分子筛选模型和分子生物色谱 | 第24-26页 |
| ·细胞模型和细胞膜色谱 | 第26-27页 |
| ·基因芯片技术 | 第27-28页 |
| ·植物雌激素研究概况 | 第28-33页 |
| ·植物雌激素与雌激素替代疗法 | 第28-29页 |
| ·植物雌激素的种类及结构 | 第29页 |
| ·植物雌激素在体内的吸收及代谢转化 | 第29-31页 |
| ·植物雌激素对雌激素依赖性疾病的防治作用 | 第31-33页 |
| ·植物雌激素与相关中药研究 | 第33-35页 |
| ·中药传统药效与植物雌激素 | 第33-34页 |
| ·中药植物雌激素的研究前景 | 第34-35页 |
| ·中药葛根研究概况 | 第35-37页 |
| ·葛根的化学成分 | 第35-36页 |
| ·葛根的药理研究 | 第36-37页 |
| ·本课题的提出 | 第37-39页 |
| 参考文献 | 第39-51页 |
| 第二章 雌激素活性筛选平台的建立及葛根雌激素活性的初步测定 | 第51-73页 |
| ·引言 | 第51-52页 |
| ·转基因酵母雌激素活性检测模型的建立及方法改进 | 第52-65页 |
| ·实验部分 | 第52-56页 |
| ·主要试剂 | 第52-53页 |
| ·主要仪器 | 第53页 |
| ·各种缓冲液、检测液及培养基配方 | 第53-54页 |
| ·菌种 | 第54页 |
| ·被测样品的配制 | 第54页 |
| ·酵母菌种的培养 | 第54页 |
| ·β-半乳糖苷酶测定步骤 | 第54-56页 |
| ·酶活的计算 | 第56-57页 |
| ·酶活的计算公式 | 第57页 |
| ·相对酶活与相对诱导效应 | 第57页 |
| ·数据处理与分析 | 第57-58页 |
| ·EC50 的计算 | 第57-58页 |
| ·相对效力 | 第58页 |
| ·结果与讨论 | 第58-65页 |
| ·转基因酵母法检测植物雌激素 | 第58页 |
| ·三种方法测定β-半乳糖苷酶的比较 | 第58-61页 |
| ·改进的酶法破壁的方法的优化与评价 | 第61-65页 |
| ·葛根提取物的雌激素活性的初步检测 | 第65-69页 |
| ·实验部分 | 第65-66页 |
| ·仪器与试剂 | 第65页 |
| ·葛根总提物及不同极性部位的制备 | 第65-66页 |
| ·标准对照品的雌激素活性检测 | 第66页 |
| ·葛根总提物及不同极性部位的雌激素活性检测 | 第66页 |
| ·酶活的计算 | 第66页 |
| ·数据处理与分析 | 第66页 |
| ·结果与讨论 | 第66-69页 |
| ·17β-雌二醇及标准对照品的雌激素活性检测 | 第66-68页 |
| ·葛根总提物及不同极性提取物的雌激素活性 | 第68-69页 |
| ·小结 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-73页 |
| 第三章 葛根分析方法的建立 | 第73-93页 |
| ·引言 | 第73页 |
| ·色谱分析方法的确立 | 第73-84页 |
| ·实验部分 | 第73-74页 |
| ·仪器与试剂 | 第73-74页 |
| ·样品制备 | 第74页 |
| ·色谱条件优化 | 第74页 |
| ·数据处理 | 第74页 |
| ·结果与讨论 | 第74-84页 |
| ·色谱模式及色谱柱的选择 | 第75页 |
| ·流动相的优化 | 第75-77页 |
| ·操作条件的优化 | 第77-83页 |
| ·方法的重现性和精密度 | 第83-84页 |
| ·葛根提取组分的HPLC-DAD-UV 分析 | 第84-90页 |
| ·实验部分 | 第84-85页 |
| ·仪器与试剂 | 第84-85页 |
| ·样品制备 | 第85页 |
| ·葛根总提物及不同极性部位的HPLC 分析 | 第85页 |
| ·理论相对诱导效应（RIE）的计算 | 第85页 |
| ·结果与讨论 | 第85-90页 |
| ·葛根总提物的HPLC-DAD-UV 分析 | 第85-86页 |
| ·葛根不同极性部位的HPLC-DAD-UV 分析 | 第86-90页 |
| ·分析数据与活性数据的关联 | 第90页 |
| ·小结 | 第90-91页 |
| 参考文献 | 第91-93页 |
| 第四章 葛根组分库的建立 | 第93-117页 |
| ·引言 | 第93-95页 |
| ·液相制备色谱制备葛根组分的方法策略 | 第95-98页 |
| ·线性放大技术在制备色谱中的应用 | 第96-97页 |
| ·高效液相制备色谱制备葛根组分的方法策略 | 第97-98页 |
| ·葛根乙酸乙酯部位的组分库的建立 | 第98-108页 |
| ·实验部分 | 第98-99页 |
| ·仪器与试剂 | 第98页 |
| ·乙酸乙酯部位的制备 | 第98页 |
| ·乙酸乙酯部位的预处理 | 第98页 |
| ·优化分析型液相色谱条件 | 第98-99页 |
| ·制备色谱分离条件 | 第99页 |
| ·制备组分的收集 | 第99页 |
| ·制备组分的HPLC 分析 | 第99页 |
| ·结果与讨论 | 第99-108页 |
| ·乙酸乙酯部位的预处理 | 第99-100页 |
| ·分析条件的优化 | 第100-101页 |
| ·线性放大到制备型色谱 | 第101页 |
| ·组分收集 | 第101-102页 |
| ·葛根乙酸乙酯组分的化学指纹谱 | 第102-108页 |
| ·葛根正丁醇部位的组分库的建立 | 第108-115页 |
| ·实验部分 | 第108-109页 |
| ·仪器与试剂 | 第108页 |
| ·正丁醇部位的制备 | 第108页 |
| ·正丁醇部位的预处理 | 第108页 |
| ·优化分析型液相色谱条件 | 第108页 |
| ·制备色谱分离条件 | 第108页 |
| ·制备组分的收集 | 第108-109页 |
| ·制备组分的HPLC 分析 | 第109页 |
| ·结果与讨论 | 第109-115页 |
| ·分析条件的优化 | 第109页 |
| ·线性放大到制备型色谱 | 第109-111页 |
| ·组分收集 | 第111页 |
| ·葛根正丁醇部位制备组分的化学指纹谱 | 第111-115页 |
| ·小结 | 第115页 |
| 参考文献 | 第115-117页 |
| 第五章 葛根乙酸乙酯部位组分库的雌激素生物活性筛选 | 第117-129页 |
| ·引言 | 第117-119页 |
| ·实验部分 | 第119-120页 |
| ·仪器与试剂 | 第119页 |
| ·乙酸乙酯部位组分库的YES 筛选 | 第119页 |
| ·活性组分的HPLC-MS 分析 | 第119-120页 |
| ·结果与讨论 | 第120-126页 |
| ·乙酸乙酯部位组分库的雌激素活性的筛选 | 第120-124页 |
| ·活性数据与HPLC 分析数据的关联 | 第124页 |
| ·YC18-25 中可疑化合物X 的确认 | 第124-126页 |
| ·小结 | 第126-127页 |
| 参考文献 | 第127-129页 |
| 第六章 高效液相色谱/质谱联用技术在葛根成分分析中的应用 | 第129-159页 |
| ·引言 | 第129-130页 |
| ·实验部分 | 第130-131页 |
| ·仪器与试剂 | 第130页 |
| ·色谱条件 | 第130页 |
| ·质谱条件 | 第130-131页 |
| ·结果与讨论 | 第131-156页 |
| ·质谱条件的优化 | 第131-134页 |
| ·几种典型异黄酮的LC-MS和LC-MS-MS分析 | 第134-141页 |
| ·葛根总提物的LC/MS(MS)分析 | 第141-156页 |
| ·小结 | 第156-157页 |
| 参考文献 | 第157-159页 |
| 第七章 葛根异黄酮的生物转化 | 第159-183页 |
| ·引言 | 第159-160页 |
| ·葛根酶解条件的研究 | 第160-166页 |
| ·实验部分 | 第160-162页 |
| ·仪器与试剂 | 第160-161页 |
| ·样品制备 | 第161页 |
| ·菌种的培养及酶液的提取 | 第161页 |
| ·葛根的酶解 | 第161-162页 |
| ·HPLC 分析酶解产物 | 第162页 |
| ·结果与讨论 | 第162-165页 |
| ·微生物酶的应用 | 第162-163页 |
| ·葛根异黄酮酶解的化学结构基础 | 第163页 |
| ·葛根总提物酶解条件的考察 | 第163-165页 |
| ·结论 | 第165-166页 |
| ·葛根生物转化后的雌激素活性与物质成分的变化 | 第166-172页 |
| ·实验部分 | 第166-167页 |
| ·仪器与试剂 | 第166页 |
| ·样品制备 | 第166页 |
| ·菌种的培养和酶液的提取 | 第166-167页 |
| ·葛根的酶解 | 第167页 |
| ·色谱条件 | 第167页 |
| ·YES测定雌激素活性 | 第167页 |
| ·β-半乳糖苷酶活性计算及EC50 计算方法 | 第167页 |
| ·结果与讨论 | 第167-172页 |
| ·葛根总提物酶解后雌激素活性与物质成分的变化 | 第167-169页 |
| ·乙酸乙酯部位酶解后雌激素活性及物质成分的变化 | 第169-172页 |
| ·正丁醇部位酶解后雌激素活性及物质成分的变化 | 第172页 |
| ·选择离子监测（SIM）在分析葛根总提物的生物转化中的应用 | 第172-180页 |
| ·实验部分 | 第174-175页 |
| ·仪器与试剂 | 第174页 |
| ·色谱条件 | 第174页 |
| ·质谱条件 | 第174-175页 |
| ·结果与讨论 | 第175-180页 |
| ·葛根总提物酶解前后的质谱图比较 | 第175-176页 |
| ·化合物9 和13 的生物转化 | 第176-177页 |
| ·化合物17 的生物转化 | 第177页 |
| ·化合物20 的生物转化 | 第177-178页 |
| ·化合物26的生物转化 | 第178-180页 |
| ·未发生生物转化的化合物 | 第180页 |
| ·小结 | 第180-181页 |
| 参考文献 | 第181-183页 |
| 作者简介及发表文章 | 第183-185页 |
| 致谢 | 第185页 |
