Ar～+介导白棉全DNA转化彩棉的研究
| 引言 | 第1页 |
| 第一章 离子束生物工程技术的研究进展 | 第10-16页 |
| ·离子束生物工程技术概况 | 第10-11页 |
| ·离子束生物工程的基本原理简介 | 第11页 |
| ·外源DNA 直接导入受体植物的研究 | 第11-12页 |
| ·外源DNA 直接导入受体植物的理论基础 | 第12页 |
| ·离子束介导转化全DNA 的应用 | 第12-13页 |
| ·外源DNA 直接导入技术的评价 | 第13-14页 |
| ·在离子束生物工程中有待研究的问题 | 第14-15页 |
| ·离子束对作物生长发育的刺激作用 | 第14-15页 |
| ·离子束辐射后细胞近旁效应 | 第15页 |
| ·离子束技术的现实意义 | 第15-16页 |
| 第二章 彩色棉的研究进展 | 第16-23页 |
| ·彩色棉概况 | 第16页 |
| ·彩色棉的优势 | 第16-17页 |
| ·国内外彩色棉的研究概况 | 第17-18页 |
| ·彩色棉研究中存在的问题 | 第18页 |
| ·可能的解决途径 | 第18-19页 |
| ·彩色棉的发展前景 | 第19页 |
| ·基因工程途径改良棉花纤维色泽的研究 | 第19-20页 |
| ·棉花枯萎病概况 | 第20-23页 |
| ·棉花枯萎病的生物学特征 | 第20-21页 |
| ·致病机制 | 第21页 |
| ·发病条件 | 第21-23页 |
| 第三章 分子标记技术 | 第23-30页 |
| ·RAPD 标记的技术特点 | 第23页 |
| ·RAPD 技术的优缺点 | 第23-24页 |
| ·常用的分子标记比较 | 第24-25页 |
| ·RAPD 技术在植物遗传育种研究中的应用进展 | 第25-30页 |
| ·遗传图谱的绘制 | 第25页 |
| ·在植物辅助选择育种中的应用 | 第25-30页 |
| 第二部分 实验部分 | 第30-59页 |
| 第一章 离子注入彩棉种子引起的生物学效应 | 第30-35页 |
| ·引言 | 第30页 |
| ·实验材料与试剂 | 第30页 |
| ·实验材料 | 第30页 |
| ·实验试剂 | 第30页 |
| ·实验方法 | 第30-32页 |
| ·离子注入 | 第30-31页 |
| ·DNA 提取 | 第31页 |
| ·DNA 介导 | 第31页 |
| ·发芽率的测定 | 第31页 |
| ·田间试验 | 第31-32页 |
| ·实验结果 | 第32-35页 |
| ·Ar~+注入对彩棉种子发芽率的影响 | 第32-33页 |
| ·离子注入彩棉M1代主要经济性状的变化 | 第33-34页 |
| ·各经济性状间的相关性分析 | 第34-35页 |
| 第二章 离子注入彩棉的生理生化效应 | 第35-49页 |
| ·引言 | 第35页 |
| ·实验材料、试剂 | 第35-36页 |
| ·实验材料 | 第35页 |
| ·实验试剂 | 第35页 |
| ·实验菌株 | 第35-36页 |
| ·实验方法 | 第36-38页 |
| ·Ar~+离子注入 | 第36页 |
| ·棉苗培养条件 | 第36页 |
| ·枯萎病毒素处理 | 第36页 |
| ·种子的处理 | 第36页 |
| ·病原菌接种 | 第36页 |
| ·丙二醛(MDA)含量的测定 | 第36-37页 |
| ·可溶性总糖(SS)的测定 | 第37页 |
| ·丹宁(AC)含量的测定 | 第37页 |
| ·茶多酚含量(GTP)的测定 | 第37-38页 |
| ·多酚氧化酶(PPO)的测定 | 第38页 |
| ·过氧化物酶(POD)的测定 | 第38页 |
| ·实验结果 | 第38-45页 |
| ·丙二醛(MDA)含量的变化 | 第38-39页 |
| ·可溶性总糖(SS)的变化 | 第39-40页 |
| ·单宁含量(TA)的变化 | 第40-41页 |
| ·茶多酚(GTP)含量的变化 | 第41-42页 |
| ·多酚氧化酶含量(PPO)的变化 | 第42-43页 |
| ·过氧化物酶活性(POD)的变化 | 第43页 |
| ·各指标间相关性分析 | 第43-45页 |
| ·讨论 | 第45-49页 |
| ·离子注入引起的膜质过氧化作用 | 第45页 |
| ·离子注入引起的可溶性糖的变化 | 第45页 |
| ·离子注入引起的次生代谢物的变化 | 第45-46页 |
| ·离子注入与保护酶系统的关系 | 第46-47页 |
| ·离子注入引起的各指标间相关性分析 | 第47-49页 |
| 第三章 白棉全DNA 转入彩棉的RAPD 验证 | 第49-59页 |
| ·引言 | 第49页 |
| ·材料与方法 | 第49-50页 |
| ·实验材料 | 第49页 |
| ·试剂与溶液 | 第49-50页 |
| ·实验方法 | 第50-51页 |
| ·总DNA 的提取 | 第50-51页 |
| ·DNA 质量检测 | 第51页 |
| ·RAPD 分析 | 第51-52页 |
| ·PCR 反映体系的建立及热循环程序 | 第51-52页 |
| ·电泳检测 | 第52页 |
| ·RAPD 最佳体系的探索 | 第52-55页 |
| ·模板DNA 对RAPD 结果的影响 | 第52页 |
| ·引物浓度对RAPD 结果的影响 | 第52-53页 |
| ·MgCl_2 浓度对RAPD 结果的影响 | 第53页 |
| ·dNTP 浓度对RAPD 结果的影响 | 第53-54页 |
| ·Taq 酶对RAPD 结果的影响 | 第54页 |
| ·BSA 在RAPD 分析中的作用 | 第54-55页 |
| ·引物的筛选及扩增结果 | 第55-56页 |
| ·讨论 | 第56-59页 |
| ·模板DNA 纯度对RAPD 的影响 | 第56页 |
| ·引物浓度对RAPD 的影响 | 第56页 |
| ·MgC12浓度对RAPD 的影响 | 第56-57页 |
| ·dNTP 浓度对RAPD 的影响 | 第57页 |
| ·Taq 酶对RAPD 反应的影响 | 第57页 |
| ·BSA 浓度对RAPD 的影响 | 第57页 |
| ·其他因素的影响 | 第57-59页 |
| 第三部分 结论与展望 | 第59-62页 |
| 参考文献 | 第62-67页 |
| 附录1 | 第67-68页 |
| 附录2 | 第68-71页 |
