| 中文摘要 | 第1-9页 |
| 英文摘要 | 第9-17页 |
| 缩略词表 | 第17-19页 |
| 1 绪论 | 第19-25页 |
| ·课题的目的和意义 | 第19-21页 |
| ·主要研究内容、技术关键和预期目标 | 第21-22页 |
| ·主要研究内容 | 第21-22页 |
| ·技术关键 | 第22页 |
| ·预期达到的目标 | 第22页 |
| ·拟采取的技术路线和研究步骤 | 第22-25页 |
| ·技术路线 | 第22-23页 |
| ·研究步骤 | 第23-25页 |
| 2 胰岛素抵抗及其发病机制 | 第25-41页 |
| ·胰岛素及其生理作用 | 第26-29页 |
| ·胰岛素 | 第26页 |
| ·胰岛素原 | 第26-27页 |
| ·胰岛素的分泌及其影响因素 | 第27页 |
| ·胰岛素的生理效应 | 第27-29页 |
| ·胰岛素受体介导的信号转导途径 | 第29-34页 |
| ·胰岛素在细胞水平的作用 | 第29-32页 |
| ·胰岛素后体底物的作用 | 第32-33页 |
| ·胰岛素的信号终止 | 第33-34页 |
| ·胰岛素抵抗的遗传和环境因素 | 第34-38页 |
| ·遗传因素 | 第34-37页 |
| ·环境因素 | 第37-38页 |
| ·胰岛素抵抗的靶器官分类 | 第38页 |
| ·肝胰岛素抵抗 | 第38页 |
| ·肌抵抗胰岛素 | 第38页 |
| ·脂肪组织胰岛素抵抗 | 第38页 |
| ·受体水平的胰岛素抵抗 | 第38-41页 |
| ·胰岛素受体前因素 | 第38-39页 |
| ·受体缺陷 | 第39页 |
| ·受体后缺陷 | 第39-41页 |
| 3 基因芯片技术在医药研究中的应用 | 第41-49页 |
| ·基因芯片的概念、原理及分类 | 第41-44页 |
| ·基因芯片的概念 | 第41页 |
| ·基因芯片的工作原理 | 第41-44页 |
| ·基因芯片的分类 | 第44页 |
| ·基因芯片在医药方面的应用 | 第44-48页 |
| ·基因芯片在诊断中的应用 | 第44-45页 |
| ·基因芯片在药物研究中的运用 | 第45-46页 |
| ·中药方面的应用 | 第46-48页 |
| ·存在的问题 | 第48页 |
| ·展望 | 第48-49页 |
| 4 胰岛素抵抗动物模型建立 | 第49-53页 |
| ·引言 | 第49页 |
| ·材料与方法 | 第49-50页 |
| ·材料 | 第49页 |
| ·方法 | 第49-50页 |
| ·结果 | 第50页 |
| ·讨论 | 第50-53页 |
| ·动物模型 | 第50-52页 |
| ·高果糖大鼠模型的建立 | 第52-53页 |
| 5 胰岛素抵抗的实验机制 | 第53-65页 |
| ·引言 | 第53页 |
| ·材料与方法 | 第53-55页 |
| ·材料 | 第53-54页 |
| ·方法 | 第54-55页 |
| ·结果 | 第55-57页 |
| ·各项指标的比较 | 第55-56页 |
| ·胰岛素抵抗的相关因素分析:以HOMA－IR为分析变量与多项因素之间进行多元线性相关分析。 | 第56页 |
| ·血清瘦素水平相关因素分析 | 第56-57页 |
| ·讨论 | 第57-65页 |
| ·IR 的检测方法 | 第57-58页 |
| ·动物模型 | 第58页 |
| ·胰岛素抵抗及代偿性高胰岛素血症是高血压的重要发病原因 | 第58-61页 |
| ·血清瘦素水平与胰岛素抵抗关系密切，瘦素可能参与胰岛素抵抗致高血压的发病机制 | 第61-63页 |
| ·动物模型显示在形成高血压的同时伴有脂代谢紊乱 | 第63-65页 |
| 6 糖脂消降低胰岛素抵抗的实验机制 | 第65-73页 |
| ·引言 | 第65页 |
| ·材料与方法 | 第65-66页 |
| ·材料 | 第65页 |
| ·方法 | 第65-66页 |
| ·结果 | 第66-69页 |
| ·糖脂消对大鼠血清胰岛素、瘦素水平和HOMA-IR的影响 | 第66-67页 |
| ·糖脂消对大鼠血脂的影响 | 第67页 |
| ·糖脂消对大鼠红细胞内钙、镁的影响 | 第67-68页 |
| ·药物干预4周各组大鼠血压变化的趋势 | 第68-69页 |
| ·讨论 | 第69-73页 |
| ·中医药对胰岛素抵抗治疗 | 第69页 |
| ·中药的组方原则 | 第69-70页 |
| ·糖脂消能有效改善胰岛素抵抗，调节血脂异常，并有一定的降压作用 | 第70-71页 |
| ·罗格列酮对胰岛素抵抗影响 | 第71-73页 |
| 7 基因芯片技术筛选胰岛素抵抗基因表达谱 | 第73-87页 |
| ·引言 | 第73页 |
| ·材料与方法 | 第73-77页 |
| ·材料 | 第73-74页 |
| ·方法 | 第74-77页 |
| ·结果 | 第77-84页 |
| ·胰岛素抵抗大鼠模型的建立 | 第77页 |
| ·总RNA的质量鉴定 | 第77-78页 |
| ·芯片杂交信号散点图 | 第78-79页 |
| ·杂交扫描图 | 第79-82页 |
| ·模型组和正常组基因表达差异的比较: | 第82-84页 |
| ·讨论 | 第84-87页 |
| 8 糖脂消对胰岛素基因表达谱的影响 | 第87-97页 |
| ·引言 | 第87页 |
| ·材料与方法 | 第87-88页 |
| ·材料 | 第87页 |
| ·方法 | 第87-88页 |
| ·结果 | 第88-94页 |
| ·总RNA的质量鉴定 | 第88页 |
| ·芯片杂交信号散点图 | 第88-89页 |
| ·杂交扫描图 | 第89-92页 |
| ·糖脂消组和模型组基因表达差异的比较 | 第92-94页 |
| ·讨论 | 第94-97页 |
| 9 结论与展望 | 第97-99页 |
| ·结论 | 第97页 |
| ·问题 | 第97页 |
| ·展望 | 第97-99页 |
| 致 谢 | 第99-101页 |
| 参考文献 | 第101-113页 |
| 附 录 | 第113-115页 |
