| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-21页 |
| 第一章 绪论 | 第21-49页 |
| ·植物次级代谢细胞工程的概况 | 第21-24页 |
| ·植物细胞工程的兴起是历史发展的必然 | 第21页 |
| ·植物细胞培养技术的优越性 | 第21-22页 |
| ·植物细胞培养技术的历史回顾 | 第22-24页 |
| ·植物细胞培养技术生产花青素的研究概况 | 第24-26页 |
| ·花青素的研究概况 | 第24-26页 |
| ·花青素的结构、性质、存在与合成代谢途径 | 第24-25页 |
| ·花青素的用途及商业前景 | 第25-26页 |
| ·植物细胞培养生产花青素的研究概况 | 第26页 |
| ·利用玫瑰茄细胞培养生产花青素的研究进展 | 第26-33页 |
| ·玫瑰茄的植物学特性 | 第26-27页 |
| ·关于玫瑰茄花青素提取及应用方面的研究 | 第27-30页 |
| ·pH对玫瑰茄红色素稳定性的影响 | 第27-28页 |
| ·温度对玫瑰茄红色素稳定性的影响 | 第28-29页 |
| ·光对玫瑰茄红色素稳定性的影响 | 第29页 |
| ·金属离子对玫瑰茄红色素稳定性的影响 | 第29页 |
| ·氧化剂和还原剂对玫瑰茄红色素稳定性的影响 | 第29-30页 |
| ·添加剂对玫瑰茄红色素稳定性的影响 | 第30页 |
| ·利用玫瑰茄细胞技术培养生产花青素的研究进展 | 第30-33页 |
| ·植物原生质体融合研究进展 | 第33-38页 |
| ·植物原生质体融合技术的应用现状 | 第33-35页 |
| ·原生质体融合在主要农作物良种选育上应用获得很大的成功 | 第33-34页 |
| ·原生质体融合在药用植物品种改良方面的应用 | 第34页 |
| ·原生质体融合在经济作物品种改良方面的应用 | 第34-35页 |
| ·原生质体不对称融合技术在提高植物细胞培养生长速率方面的应用 | 第35页 |
| ·植物原生质体融合的操作技术 | 第35-38页 |
| ·原生质体制备的细胞材料 | 第35-36页 |
| ·原生质体制备方法 | 第36页 |
| ·植物原生质体的保存与培养 | 第36-37页 |
| ·原生质体融合亲本材料标记以及融合子的筛选方法 | 第37页 |
| ·提高融合率的手段 | 第37页 |
| ·融合子的鉴定手段 | 第37-38页 |
| ·原生质体融合技术发展趋势 | 第38页 |
| ·微甘菊研究进展 | 第38-40页 |
| ·分类特征 | 第38-39页 |
| ·生长特性及传播途径 | 第39页 |
| ·危害情况 | 第39页 |
| ·微甘菊清除方法 | 第39-40页 |
| ·微甘菊的研究动态 | 第40页 |
| ·本课题的研究目的和主要研究内容 | 第40-41页 |
| ·研究目的 | 第40页 |
| ·主要研究内容 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-49页 |
| 第二章 微甘菊愈伤组织诱导与继代培养 | 第49-64页 |
| ·引言 | 第49页 |
| ·材料与仪器 | 第49-50页 |
| ·材料 | 第49页 |
| ·实验仪器 | 第49-50页 |
| ·主要试剂 | 第50页 |
| ·实验方法 | 第50-52页 |
| ·植物细胞 | 第50页 |
| ·主要培养基 | 第50-51页 |
| ·微甘菊愈伤组织的诱导 | 第51-52页 |
| ·微甘菊细胞的继代培养与培养基优化 | 第52页 |
| ·结果与讨论 | 第52-61页 |
| ·关于微甘菊愈伤组织诱导的研究 | 第52-58页 |
| ·环境条件对愈伤组织诱导的影响 | 第52-54页 |
| ·不同部位外植体诱导效果比较 | 第54页 |
| ·不同培养基和外源激素对微甘菊愈伤组织诱导的影响 | 第54-56页 |
| ·微甘菊愈伤组织诱导过程图解 | 第56-58页 |
| ·关于微甘菊愈伤组织继代培养的研究 | 第58-61页 |
| ·添加抗氧化剂对愈伤组织培养的影响 | 第59页 |
| ·继代培养基中激素组合的优化 | 第59-60页 |
| ·添加天然物质对微甘菊愈伤组织生长的影响 | 第60-61页 |
| ·稳定继代培养的微甘菊愈伤组织 | 第61页 |
| ·本章小结 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-64页 |
| 第三章 微甘菊细胞悬浮培养 | 第64-80页 |
| ·引言 | 第64页 |
| ·材料与仪器 | 第64-65页 |
| ·材料 | 第64页 |
| ·实验仪器 | 第64-65页 |
| ·实验方法 | 第65页 |
| ·微甘菊细胞悬浮培养体系的建立 | 第65页 |
| ·细胞生物量的测定 | 第65页 |
| ·培养基组分测定 | 第65页 |
| ·糖的测定 | 第65页 |
| ·培养液中NO_3~-的测定 | 第65页 |
| ·培养液中NH_4~+的测定 | 第65页 |
| ·培养液中PO_4~(3-)的测定 | 第65页 |
| ·结果与讨论 | 第65-77页 |
| ·碳源对微甘菊细胞生长与营养消耗的影响 | 第65-70页 |
| ·不同碳源对微甘菊细胞生长的影响 | 第66-67页 |
| ·蔗糖浓度对微甘菊细胞生长的影响 | 第67-68页 |
| ·不同蔗糖浓度下微甘菊细胞对培养液中残糖的消耗规律 | 第68-69页 |
| ·不同蔗糖浓度下微甘菊细胞对培养液中氮源的消耗规律 | 第69-70页 |
| ·氮源组合对微甘菊细胞生长的影响 | 第70-73页 |
| ·氮源组合对微甘菊细胞培养液中pH值变化曲线的影响 | 第70-71页 |
| ·氮源组合对微甘菊细胞生长的影响 | 第71-73页 |
| ·接种量对悬浮培养微甘菊细胞生长的影响 | 第73-75页 |
| ·微甘菊细胞悬浮培养的生长曲线 | 第75-77页 |
| ·本章小结 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-80页 |
| 第四章 微甘菊原生质体制备与培养 | 第80-98页 |
| ·引言 | 第80-81页 |
| ·材料、仪器与试剂 | 第81-83页 |
| ·微甘菊细胞材料 | 第81页 |
| ·仪器设备 | 第81页 |
| ·CPW溶液和微甘菊破壁混合酶液的配制 | 第81-82页 |
| ·原生质体培养基 | 第82-83页 |
| ·实验方法 | 第83-85页 |
| ·原生质体制备 | 第83页 |
| ·材料制备 | 第83页 |
| ·预处理 | 第83页 |
| ·原生质体的分离 | 第83页 |
| ·原生质体的纯化 | 第83页 |
| ·原生质体产量的测定 | 第83-84页 |
| ·活原生质体比例测定 | 第84页 |
| ·原生质体的培养 | 第84-85页 |
| ·结果与讨论 | 第85-95页 |
| ·细胞材料与原生质体制备的关系 | 第85-87页 |
| ·以愈伤组织为材料进行原生质体分离 | 第85-87页 |
| ·以悬浮培养细胞系为材料进行原生质体分离 | 第87页 |
| ·酶解前预处理对原生质体制备的影响 | 第87-88页 |
| ·酶解因素对微甘菊原生质体产量和活力的影响 | 第88-91页 |
| ·低速振荡酶解与静止酶解条件下原生质体分离效果比较 | 第88-89页 |
| ·不同酶液组成对原生质体分离的影响 | 第89-91页 |
| ·微甘菊细胞破壁过程观察 | 第91页 |
| ·原生质体培养 | 第91-92页 |
| ·原生质体分裂生长影响因素的探讨 | 第92-95页 |
| ·培养密度对原生质体生长的影响 | 第92页 |
| ·培养基种类对原生质体培养的影响 | 第92-93页 |
| ·附加的激素组合对原生质体生长的影响 | 第93-95页 |
| ·培养条件对原生质体培养的影响 | 第95页 |
| ·培养方法对原生质体培养效果的影响 | 第95页 |
| ·本章小结 | 第95-96页 |
| 参考文献 | 第96-98页 |
| 第五章 玫瑰茄原生质体制备与培养 | 第98-107页 |
| ·引言 | 第98页 |
| ·材料与试剂 | 第98-99页 |
| ·玫瑰茄细胞材料 | 第98-99页 |
| ·CPW溶液配制 | 第99页 |
| ·玫瑰茄破壁混合酶液的制备 | 第99页 |
| ·原生质体培养基 | 第99页 |
| ·实验方法 | 第99-100页 |
| ·原生质体制备 | 第99页 |
| ·原生质体制备的材料 | 第99页 |
| ·预处理 | 第99页 |
| ·原生质体的分离 | 第99页 |
| ·原生质体的纯化 | 第99页 |
| ·原生质体产量的测定 | 第99页 |
| ·原生质体活力测定 | 第99-100页 |
| ·原生质体的培养 | 第100页 |
| ·结果与讨论 | 第100-105页 |
| ·悬浮培养细胞系为材料进行原生质体分离的研究 | 第100-101页 |
| ·酶解前预处理对原生质体制备的影响 | 第101页 |
| ·酶解因素对玫瑰茄原生质体产量和活力的影响 | 第101-103页 |
| ·低速振荡与静止条件下酶解对原生质体分离效果比较 | 第101-102页 |
| ·酶液组成对原生质体分离的影响 | 第102-103页 |
| ·原生质体分裂生长影响因素 | 第103-105页 |
| ·激素组合对原生质体生长的影响 | 第103-104页 |
| ·培养条件对原生质体培养的影响 | 第104-105页 |
| ·本章小结 | 第105页 |
| 参考文献 | 第105-107页 |
| 第六章 微甘菊与玫瑰茄原生质体的非对称融合 | 第107-123页 |
| ·引言 | 第107-108页 |
| ·材料与设备 | 第108-109页 |
| ·材料 | 第108页 |
| ·仪器设备 | 第108页 |
| ·主要试剂 | 第108-109页 |
| ·实验方法 | 第109-111页 |
| ·原生质体预处理 | 第109页 |
| ·原生质体活力测定 | 第109页 |
| ·处理后原生质体分裂和愈伤组织再生测定 | 第109页 |
| ·原生质体融合 | 第109-110页 |
| ·融合体的筛选和培养 | 第110页 |
| ·杂种细胞的鉴定 | 第110-111页 |
| ·结果与讨论 | 第111-120页 |
| ·原生质体预处理 | 第111-113页 |
| ·不同UV照射时间对微甘菊原生质体活力和再生的影响 | 第111-112页 |
| ·不同浓度IOA预处理对玫瑰茄原生质体活力和再生的影响 | 第112-113页 |
| ·影响原生质体融合率的因素 | 第113-118页 |
| ·PEG种类与浓度对原生质体融合的影响 | 第113-114页 |
| ·融合液对融合率的影响 | 第114-115页 |
| ·处理时间对融合率的影响 | 第115-116页 |
| ·原生质体密度和融合剂滴加量对融合率的影响 | 第116-117页 |
| ·促融过程图示(附图版1～5) . | 第117-118页 |
| ·融合体的愈伤组织再生 | 第118页 |
| ·杂种细胞的鉴定结果 | 第118-120页 |
| ·再生愈伤组织形态学特征鉴定 | 第119页 |
| ·酯酶同工酶谱 | 第119页 |
| ·过氧化物酶同工酶谱 | 第119-120页 |
| ·本章小结 | 第120-121页 |
| 参考文献 | 第121-123页 |
| 第七章 杂种细胞生长与花青素积累的初步研究 | 第123-133页 |
| ·引言 | 第123页 |
| ·材料与试剂 | 第123页 |
| ·材料 | 第123页 |
| ·实验方法 | 第123-124页 |
| ·细胞生物量的测定 | 第123页 |
| ·花青素含量的测定 | 第123-124页 |
| ·杂种细胞的初筛 | 第124页 |
| ·杂种细胞的培养基和激素组合筛选 | 第124页 |
| ·杂种细胞与玫瑰茄悬浮培养的效果比较 | 第124页 |
| ·结果与讨论 | 第124-131页 |
| ·优良杂种细胞株的初步筛选 | 第124-125页 |
| ·适合杂种细胞生长的培养基和激素组合筛选 | 第125-127页 |
| ·培养基对杂种细胞生长和花青素合成的影响比较 | 第126-127页 |
| ·激素对杂种细胞生长和花青素合成的影响比较 | 第127页 |
| ·杂种细胞与微甘菊细胞悬浮培养的比较分析 | 第127-128页 |
| ·杂种细胞与玫瑰茄悬细胞浮培养的比较分析 | 第128-131页 |
| ·原生质体不对称融合技术改良细胞系的可行性探讨 | 第131页 |
| ·本章小结 | 第131-132页 |
| 参考文献 | 第132-133页 |
| 结论与展望 | 第133-137页 |
| 一 结论 | 第133-135页 |
| 二 本论文创新之处 | 第135页 |
| 三 展望 | 第135-137页 |
| 攻读学位期间发表的与学位论文内容相关的学术论文 | 第137-138页 |
| 致谢 | 第138页 |
