| 中文摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 中英文缩写对照表 | 第9-10页 |
| 第一章 前言 | 第10-20页 |
| 1.1 皮肤损伤保护的研究进展 | 第10-16页 |
| 1.1.1 皮肤损伤的模型 | 第10-12页 |
| 1.1.2 皮肤细胞损伤的可能途径 | 第12-15页 |
| 1.1.2.1 微管蛋白 | 第12-13页 |
| 1.1.2.2 整联蛋白 | 第13-14页 |
| 1.1.2.3 纤连蛋白 | 第14-15页 |
| 1.1.2.4 MMP-1 蛋白 | 第15页 |
| 1.1.3 天然产物在皮肤保护中的应用 | 第15-16页 |
| 1.2 辐射损伤免疫功能的研究进展 | 第16-18页 |
| 1.2.1 辐射诱导免疫损伤的可能途径 | 第17-18页 |
| 1.2.1.1 TNF-α | 第17页 |
| 1.2.1.2 IL-1α | 第17-18页 |
| 1.2.2 人参在免疫损伤保护方面的应用现状 | 第18页 |
| 1.3 枸杞的免疫活性 | 第18-19页 |
| 1.4 研究目的和意义 | 第19-20页 |
| 第二章 材料与方法 | 第20-25页 |
| 2.1 实验材料 | 第20-21页 |
| 2.1.1 试剂与仪器 | 第20页 |
| 2.1.2 主要溶液配置 | 第20-21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-25页 |
| 2.2.1 台盼蓝计数 | 第21页 |
| 2.2.2 磺基罗丹明B（SRB）检测细胞毒性 | 第21页 |
| 2.2.3 酶联免疫分析法（ELISA）测定IL-1α、TNFα | 第21-22页 |
| 2.2.4 流式细胞术测定细胞凋亡 | 第22页 |
| 2.2.5 流式细胞术测定细胞内ROS | 第22-23页 |
| 2.2.6 蛋白免疫印记（Western Blotting） | 第23页 |
| 2.2.7 免疫荧光 | 第23-24页 |
| 2.2.8 H_2O_2处理和重离子辐照条件 | 第24-25页 |
| 第三章 结果与分析 | 第25-39页 |
| 3.1 人参有效组分Gx保护氧化损伤的人皮肤成纤维细胞 | 第25-30页 |
| 3.1.1 人参有效组分Gx改善损伤细胞的形态 | 第25页 |
| 3.1.2 人参有效组分Gx提高损伤细胞的增殖率 | 第25-26页 |
| 3.1.3 人参有效组分Gx恢复微管蛋白的表达排列 | 第26-27页 |
| 3.1.4 人参有效组分Gx恢复整联蛋白的表达排列 | 第27-28页 |
| 3.1.5 人参有效组分Gx恢复纤连蛋白的表达排列 | 第28-29页 |
| 3.1.6 人参有效组分Gx恢复MMP-1 蛋白的分泌 | 第29-30页 |
| 3.2 人参有效组分Gx保护重离子辐照损伤的人B淋巴母细胞 | 第30-33页 |
| 3.2.1 人参有效组分Gx改善细胞形态 | 第30页 |
| 3.2.2 人参有效组分Gx促进细胞增殖 | 第30-31页 |
| 3.2.3 人参有效组分Gx抑制细胞凋亡 | 第31-32页 |
| 3.2.4 人参有效组分Gx抑制ROS的产生 | 第32页 |
| 3.2.5 人参有效组分Gx调控炎症因子的分泌 | 第32-33页 |
| 3.3 枸杞有效组分保护氧化损伤的人B淋巴母细胞 | 第33-39页 |
| 3.3.1 枸杞皮渣提取物的免疫活性初筛 | 第33页 |
| 3.3.2 枸杞酒提取物的免疫活性初筛 | 第33-34页 |
| 3.3.3 地骨皮提取物的免疫活性初筛 | 第34-35页 |
| 3.3.4 枸杞有效组分对氧化损伤细胞的保护作用 | 第35-36页 |
| 3.3.5 枸杞有效组份调控炎症因子的分泌 | 第36-39页 |
| 第四章 讨论 | 第39-41页 |
| 第五章 结论 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-48页 |
| 在学期间的研究成果 | 第48-49页 |
| 致谢 | 第49页 |
