| 摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-13页 |
| 1 引言 | 第13-34页 |
| ·信息化合物对昆虫行为的作用 | 第13页 |
| ·昆虫对化学信息的感受机制 | 第13-15页 |
| ·昆虫（家蚕）的嗅觉生理 | 第13-14页 |
| ·昆虫（家蚕）的味觉生理 | 第14-15页 |
| ·昆虫气味结合蛋白的研究进展 | 第15-26页 |
| ·气味结合蛋白的种类 | 第16-17页 |
| ·气味结合蛋白的生化特性 | 第17-19页 |
| ·气味结合蛋白的表达及分布 | 第19-22页 |
| ·气味结合蛋白的研究方法 | 第22-23页 |
| ·气味结合蛋白的生理功能 | 第23-25页 |
| ·气味结合蛋白与气味分子作用的机制 | 第25-26页 |
| ·昆虫化学感受蛋白及气味受体 | 第26-29页 |
| ·化学感受蛋白 | 第26-28页 |
| ·气味受体 | 第28-29页 |
| ·半定量RT-PCR 技术简介 | 第29-32页 |
| ·半定量RT-PCR 技术原理 | 第30页 |
| ·半定量RT-PCR 技术的关键因素 | 第30-31页 |
| ·半定量RT-PCR 技术的优点 | 第31-32页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第32-34页 |
| 2 材料与方法 | 第34-39页 |
| ·试验材料 | 第34-35页 |
| ·生物材料 | 第34页 |
| ·主要试剂、缓冲液 | 第34-35页 |
| ·主要仪器 | 第35页 |
| ·试验方法 | 第35-39页 |
| ·引物设计 | 第35-36页 |
| ·家蚕组织总RNA 的抽提 | 第36-37页 |
| ·cDNA 的合成 | 第37页 |
| ·半定量RT-PCR 反应体系及条件设置 | 第37-39页 |
| ·退火温度的确定 | 第37页 |
| ·循环数的确定 | 第37页 |
| ·RT-PCR 反应体系 | 第37-38页 |
| ·电泳图片的获得 | 第38页 |
| ·A3 及obp 基因表达量的定量分析 | 第38-39页 |
| 3 结果与分析 | 第39-62页 |
| ·半定量RT-PCR 反应条件的确立 | 第39-40页 |
| ·RNA 提取效果的鉴定 | 第39页 |
| ·引物设计和退火温度的确定 | 第39-40页 |
| ·循环数的确定 | 第40页 |
| ·家蚕幼虫期obp基因表达分析 | 第40-46页 |
| ·不同发育期头部器官obp基因表达的差异 | 第40-44页 |
| ·5龄中期不同组织器官obp基因表达的差异 | 第44页 |
| ·家蚕不同品种5 龄中期全头部obp 基因表达的差异 | 第44-46页 |
| ·家蚕蛹期和成虫期obp 基因表达分析 | 第46-62页 |
| ·羽化前一天（潜成虫）不同器官obp基因表达的差异 | 第46-50页 |
| ·成虫羽化当天不同组织器官obp 基因表达的差异 | 第50-55页 |
| ·蛹和成虫不同时期触角中obp 基因表达的差异 | 第55-59页 |
| ·家蚕不同品种成虫期触角中obp 基因表达的差异 | 第59-62页 |
| 4 讨论 | 第62-65页 |
| ·家蚕幼虫期obp基因的时空表达 | 第62-63页 |
| ·幼虫期obp基因表达与发育时期的关系 | 第62页 |
| ·幼虫期obp 基因表达的组织特异性 | 第62页 |
| ·不同蚕品种幼虫期obp基因表达的差异 | 第62-63页 |
| ·家蚕蛹期和成虫期obp 基因的时空表达 | 第63-65页 |
| ·蛹期和成虫期obp基因表达的时间特异性 | 第63页 |
| ·成虫期obp基因表达的组织特异性 | 第63-64页 |
| ·不同蚕品种成虫期obp基因表达的差异 | 第64-65页 |
| 5 结论 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
| 攻读硕士研究生期间公开发表的论文 | 第79页 |