| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-9页 |
| 第一章 新生小鼠耳蜗螺旋神经节细胞与Corti氏器原代培养及鉴定 | 第9-32页 |
| 摘要 | 第9-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-13页 |
| 1. 材料与方法 | 第13-20页 |
| ·实验的试剂、耗材及仪器 | 第13-15页 |
| ·实验方法 | 第15-20页 |
| 2 结果 | 第20-26页 |
| ·离体培养C57/BL-6J小鼠耳蜗SGCs及Corti器的观察 | 第20-21页 |
| ·离体培养的C57/BL-6J小鼠耳蜗SGCs及Corti器鉴定 | 第21-26页 |
| 3 讨论 | 第26-31页 |
| ·新生C57/BL-6J小鼠耳蜗SGCs与Corti器原代培养 | 第26-28页 |
| ·影响新生C57/BL-6J小鼠耳蜗SGCs与Corti器原代培养的因素及对策 | 第28-30页 |
| ·C57/BL-6J小鼠耳蜗SGCs与Corti器鉴定 | 第30-31页 |
| 4 结论 | 第31-32页 |
| 第二章 用脂质体介导NT-3基因体外转染小鼠耳蜗螺旋神经节和Corti器细胞 | 第32-54页 |
| 摘要 | 第32-33页 |
| ABSTRACT | 第33-35页 |
| 前言 | 第35-36页 |
| 1 材料与方法 | 第36-44页 |
| ·实验的试剂、耗材及仪器 | 第36-39页 |
| ·实验方法 | 第39-44页 |
| ·统计学处理 | 第44页 |
| 2. 结果 | 第44-48页 |
| ·质粒检测结果 | 第44页 |
| ·MCF-7细胞转染结果 | 第44页 |
| ·原代耳蜗SGCs及Corti器转染结果 | 第44-45页 |
| ·SGCs及Corti器阳性转染Western-blot结果 | 第45页 |
| ·NT-3基因转染对SGCs与Corti器毛细胞生长的影响 | 第45-48页 |
| 3 讨论 | 第48-53页 |
| ·对小鼠耳蜗细胞和器官原代培养物的转染 | 第48-51页 |
| ·Lipofectamine~(TM) LTX&PLUS/pEGFP-NT-3体外转染对小鼠SGCs与Corti器毛细胞存活能力的影响 | 第51-53页 |
| 4 结论 | 第53-54页 |
| 第三章 Lipofectamine介导NT-3基因转染对离体小鼠耳蜗庆大霉素损伤的保护实验 | 第54-89页 |
| 摘要 | 第54-56页 |
| ABSTRACT | 第56-58页 |
| 前言 | 第58-59页 |
| 1. 材料与方法 | 第59-76页 |
| ·实验的试剂、耗材及仪器 | 第59-60页 |
| ·实验方法 | 第60-75页 |
| ·统计学分析 | 第75-76页 |
| 2 结果 | 第76-85页 |
| ·各组SGCs及Corti器毛细胞的形态观察 | 第76页 |
| ·SGCs及Corti器的Caspase-3 RT-PCR结果 | 第76-77页 |
| ·SGCs及Corti器的Caspase-3 Western-blot印迹反应结果 | 第77页 |
| ·SGCs Caspase-3免疫细胞化学试验结果 | 第77页 |
| ·SGCs Hochest 33258染色检测结果 | 第77-85页 |
| 3 讨论 | 第85-88页 |
| ·耳蜗毛细胞及SGCs损伤模型建立 | 第85-86页 |
| ·Lipofectamine LTX&PLUS介导NT-3转染对离体耳蜗损伤的保护作用 | 第86-88页 |
| 4 结论 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89-97页 |
| 综述 | 第97-108页 |
| 参考文献 | 第104-108页 |
| 致谢 | 第108-109页 |
| 攻读学位期间主要研究成果目录 | 第109页 |
