| 摘要 | 第6-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 英文缩略表 | 第11-12页 |
| 第一章 引言 | 第12-19页 |
| 1.1 玉米及优质蛋白玉米概述 | 第12-13页 |
| 1.1.1 玉米是重要农作物 | 第12页 |
| 1.1.2 优质蛋白玉米 | 第12-13页 |
| 1.2 Opaque2的发现及研究进展 | 第13-14页 |
| 1.2.1 Opaque2(O2)基因的发现 | 第13页 |
| 1.2.2 Opaque2(O2)蛋白的研究 | 第13-14页 |
| 1.3 玉米淀粉合成 | 第14-17页 |
| 1.3.1 淀粉合成路径相关酶 | 第14-16页 |
| 1.3.2 转录因子对淀粉合成有重要调控作用 | 第16-17页 |
| 1.4 研究目的和内容 | 第17-19页 |
| 1.4.1 研究目的 | 第17页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第17-18页 |
| 1.4.3 技术路线 | 第18-19页 |
| 第二章 o2近等基因系中基因差异表达分析 | 第19-28页 |
| 2.1 材料与方法 | 第19-22页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第19页 |
| 2.1.2 试验仪器及耗材 | 第19-20页 |
| 2.1.3 试验方法 | 第20-22页 |
| 2.2 结果与分析 | 第22-25页 |
| 2.2.1 玉米籽粒胚乳RNA的提取 | 第22-23页 |
| 2.2.2 引物特异性检测结果 | 第23页 |
| 2.2.3 胚乳中淀粉合成重要基因的相对表达量 | 第23-25页 |
| 2.3 讨论 | 第25-28页 |
| 2.3.1 CAL58及近等基因系中O2基因与靶基因表达量变化 | 第25-26页 |
| 2.3.2 Sh1、Sh2及SSIV基因是淀粉合成的关键基因 | 第26-28页 |
| 第三章 O2调控淀粉合成基因转录表达 | 第28-38页 |
| 3.1 材料与方法 | 第28-32页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第28页 |
| 3.1.2 试验仪器及耗材 | 第28-30页 |
| 3.1.3 试验方法 | 第30-32页 |
| 3.2 结果与分析 | 第32-35页 |
| 3.2.1 载体的构建及启动子序列分析 | 第32-34页 |
| 3.2.2 拟南芥原生质体转化荧光信号检测 | 第34-35页 |
| 3.3 讨论 | 第35-38页 |
| 3.3.1 转录因子影响下游基因表达 | 第35-36页 |
| 3.3.2 O2调控下游基因 | 第36-38页 |
| 第四章 O2与淀粉合成基因启动子互作调控位点解析 | 第38-46页 |
| 4.1 材料与方法 | 第38-41页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第38页 |
| 4.1.2 试验仪器及耗材 | 第38-39页 |
| 4.1.3 试验方法 | 第39-41页 |
| 4.2 结果与分析 | 第41-44页 |
| 4.2.1 O2蛋白能够结合Sh1基因启动子ATG前724 bp~694 bp | 第41-42页 |
| 4.2.2 O2蛋白与Sh2、SSIV基因启动子结合位点尚未可知 | 第42-44页 |
| 4.3 讨论 | 第44-46页 |
| 4.3.1 O2通过结合O2 box实现对下游基因的调控 | 第44-45页 |
| 4.3.2 AbA无法抑制部分片段的转录活性 | 第45-46页 |
| 第五章 全文结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-56页 |
| 附录 | 第56-64页 |
| 致谢 | 第64-66页 |
| 作者简历 | 第66页 |
