| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 第一章 文献综述 | 第8-19页 |
| 1.1 纤维素 | 第8-10页 |
| 1.1.1 纤维素概述 | 第8页 |
| 1.1.2 植物细胞壁中的纤维素组分 | 第8-9页 |
| 1.1.3 纤维素的分子结构 | 第9-10页 |
| 1.2 纤维素的化学降解 | 第10-11页 |
| 1.2.1 酸处理法降解木质纤维素 | 第10页 |
| 1.2.2 离子液体处理木质纤维素 | 第10-11页 |
| 1.3 纤维素的酶法降解 | 第11-14页 |
| 1.3.1 纤维素酶系的来源及组成 | 第11-12页 |
| 1.3.2 纤维素酶的分子结构和催化机理 | 第12-13页 |
| 1.3.3 纤维素膨胀因子简介 | 第13-14页 |
| 1.4 多糖单加氧酶的概况 | 第14-17页 |
| 1.4.1 多糖单加氧酶的研究进程及其分类 | 第14页 |
| 1.4.2 多糖单加氧酶的结构与功能 | 第14-16页 |
| 1.4.3 多糖单加氧酶与纤维素酶的协同作用 | 第16-17页 |
| 1.5 扫描电子显微镜(SEM)在纤维素研究中的应用 | 第17页 |
| 1.6 本课题的意义及研究内容 | 第17-19页 |
| 第二章 材料与方法 | 第19-38页 |
| 2.1 实验菌株与表达载体 | 第19页 |
| 2.1.1 菌体 | 第19页 |
| 2.1.2 表达载体 | 第19页 |
| 2.2 培养基及培养条件 | 第19-20页 |
| 2.3 实验所需试剂 | 第20-24页 |
| 2.3.1 购买试剂 | 第20页 |
| 2.3.2 试剂配制 | 第20-24页 |
| 2.4 引物 | 第24-25页 |
| 2.5 实验方法 | 第25-38页 |
| 2.5.1 多糖单加氧酶lpmo-10331编码基因的克隆 | 第25-26页 |
| 2.5.2 LPMO10331巴斯德毕赤酵母X-33表达菌株的构建 | 第26-32页 |
| 2.5.3 LPMO10331蛋白的表达 | 第32-34页 |
| 2.5.4 LPMO10331酶学性质表征 | 第34-38页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第38-49页 |
| 3.1 LPMO10331酶编码基因的克隆及表达载体的构建 | 第38-44页 |
| 3.1.1 LPMO10331的氨基酸序列比对 | 第38-39页 |
| 3.1.2 LPMO10331蛋白的结构预测 | 第39页 |
| 3.1.3 pMD-18T-lpmo10331重组质粒的PCR构建及鉴定 | 第39-41页 |
| 3.1.4 pPICZαA-lpmo-10331重组质粒的构建及鉴定 | 第41-44页 |
| 3.2 诱导表达LPMO10331蛋白 | 第44-45页 |
| 3.2.1 pPICZαA-lpmo-10331/X-33重组菌的诱导表达结果 | 第44-45页 |
| 3.2.2 LPMO10331的蛋白浓度 | 第45页 |
| 3.3 LPMO10331的酶学性质表征 | 第45-49页 |
| 3.3.1 扫描电镜观察LPMO10331处理滤纸后其形态变化 | 第45-46页 |
| 3.3.2 X-射线衍射仪检测LPMO10331处理滤纸后其结晶度的变化 | 第46-47页 |
| 3.3.3 离子色谱法检测LPMO10331酶液处理滤纸后生成的寡糖产物 | 第47-49页 |
| 第四章 结论与展望 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-55页 |
| 致谢 | 第55页 |
