| 英文缩略词表 | 第1-10页 |
| 中文摘要 | 第10-13页 |
| 英文摘要 | 第13-17页 |
| 第一章 宫颈癌淋巴结转移的临床研究进展 | 第17-81页 |
| 1. 概述 | 第17-24页 |
| 2. 淋巴结转移是宫颈癌的一个影响因素 | 第24-25页 |
| 3. 淋巴系统的生理与解剖 | 第25-26页 |
| 4. 宫颈癌淋巴结转移的解剖学途径 | 第26-28页 |
| 5. 宫颈癌转移细胞特性的基础研究 | 第28-30页 |
| ·肿瘤细胞的运动性 | 第28-29页 |
| ·肿瘤细胞的粘连性 | 第29页 |
| ·肿瘤细胞的增殖性 | 第29-30页 |
| 6. 宫颈癌的淋巴结转移过程和分子机理 | 第30-39页 |
| ·宫颈癌淋巴结转移过程 | 第30页 |
| ·癌细胞进入淋巴结后的情况和淋巴结的反应 | 第30-31页 |
| ·宫颈癌细胞淋巴结转移的生物学特性 | 第31-32页 |
| ·恶性肿瘤浸润转移的主要步骤 | 第32-39页 |
| ·原发恶性肿瘤的浸润 | 第33-34页 |
| ·细胞转化的和肿瘤细胞的增殖 | 第33页 |
| ·肿瘤细胞的分离 | 第33页 |
| ·粘附并破坏细胞外基质和基底膜 | 第33-34页 |
| ·肿瘤细胞运动 | 第34页 |
| ·恶性肿瘤细胞的迁移 | 第34-36页 |
| ·恶性肿瘤细胞粘附到脉管基底膜 | 第34-36页 |
| ·穿过脉管壁进入循环系统 | 第36页 |
| ·恶性肿瘤细胞的转移 | 第36-39页 |
| ·肿瘤细胞逃脱免疫监视在循环系统中生长 | 第36-37页 |
| ·肿瘤细胞锚定粘附并破坏脉管壁 | 第37-38页 |
| ·转移灶的形成 | 第38页 |
| ·转移的休眠 | 第38页 |
| ·肿瘤细胞转移的器官选择性 | 第38-39页 |
| ·宫颈癌淋巴结转移的分子机理 | 第39页 |
| 7. 肿瘤相关基因 | 第39-48页 |
| ·肿瘤转移基因(tumer metastatic genes) | 第40-43页 |
| ·MTA1基因 | 第40页 |
| ·ras基因 | 第40-41页 |
| ·c met癌基因 | 第41页 |
| ·ezrin蛋白 | 第41-42页 |
| ·缺氧诱导因子1(HIF 1) | 第42-43页 |
| ·S100A6基因(详见后述) | 第43页 |
| ·Rab5a基因(详见后述) | 第43页 |
| ·肿瘤转移抑制基因 | 第43-48页 |
| ·nm23基因 | 第43-44页 |
| ·MHC基因 | 第44-45页 |
| ·KAI1基因 | 第45-48页 |
| ·CDH1基因 | 第48页 |
| 8. 黏附因子与恶性肿瘤的浸润转移 | 第48-56页 |
| ·层粘连蛋白 | 第49-50页 |
| ·钙粘蛋白家族(cadherins) | 第50-51页 |
| ·整合素(integrins) | 第51-53页 |
| ·免疫球蛋白超家族(immunoglobulin superfamily) | 第53页 |
| ·选择素(selectins)家族 | 第53-55页 |
| ·CD44 | 第55-56页 |
| 9. 血管的生成与肿瘤的浸润转移 | 第56-59页 |
| ·血管内皮细胞生长因子(VEGF) | 第57-58页 |
| ·碱性成纤维细胞生长因子(bFGF) | 第58-59页 |
| 10. 蛋白溶解酶与恶性肿瘤浸润转移 | 第59-64页 |
| ·基质金属蛋白酶(matrix metalloproteinases,MMPs) | 第59-61页 |
| ·纤维蛋白溶解酶及其调节因子 | 第61-62页 |
| ·组织蛋白酶(cathepsins) | 第62-64页 |
| ·组织蛋白酶D(Cathepsin D,CD) | 第63页 |
| ·组织蛋白酶B(Cathepsin B,CB) | 第63页 |
| ·组织蛋白酶L(Cathepsin L,CL) | 第63-64页 |
| 11. 宫颈癌淋巴结转移的诊断 | 第64-73页 |
| ·超声对转移性淋巴结的诊断价值 | 第65-66页 |
| ·CT对转移性淋巴结的诊断价值 | 第66-67页 |
| ·MRI对转移性淋巴结的诊断价值 | 第67-68页 |
| ·PET对转移性淋巴结的诊断价值 | 第68-69页 |
| ·淋巴造影对转移性淋巴结的诊断价值 | 第69-70页 |
| ·放射性免疫显像(radioimmunoimaging,R Ⅱ) | 第70-71页 |
| ·免疫组化 | 第71-72页 |
| ·选择性淋巴结活检及系统性淋巴结清除手术 | 第72-73页 |
| 12. 宫颈癌的治疗 | 第73-81页 |
| ·手术治疗 | 第74-76页 |
| ·手术适应证 | 第74页 |
| ·手术禁忌证 | 第74页 |
| ·手术类型 | 第74-76页 |
| ·放疗 | 第76页 |
| ·化疗 | 第76-77页 |
| ·淋巴化疗 | 第77-78页 |
| ·免疫治疗 | 第78-79页 |
| ·生物治疗 | 第79页 |
| ·基因治疗 | 第79-81页 |
| 第二章 肿瘤转移相关基因S100A6和RAB5A研究进展 | 第81-89页 |
| 1. 概述 | 第81-82页 |
| 2. Rab5a基因的研究进展 | 第82-86页 |
| 3. S100A6基因研究进展 | 第86-88页 |
| 4. 主要研究内容及拟解决的问题 | 第88-89页 |
| 第三章 荧光定量PCR研究宫颈癌S100A6和Rab5a mRNA表达情况 | 第89-118页 |
| 1. 目的 | 第89页 |
| 2. 材料和方法 | 第89-94页 |
| ·PCR原理和背景 | 第89-91页 |
| ·宫颈组织来源 | 第91-92页 |
| ·主要试剂和配制 | 第92-93页 |
| ·主要试剂 | 第92页 |
| ·主要试剂的配制 | 第92-93页 |
| ·实验主要仪器设备 | 第93-94页 |
| ·用具处理 | 第94页 |
| 3. 实验步骤和方法 | 第94-106页 |
| ·不同病变分组的宫颈组织总RNA的提取 | 第94-95页 |
| ·原理 | 第94页 |
| ·实验步骤 | 第94-95页 |
| ·总RNA的定量及纯度测定 | 第95页 |
| ·cDNA合成 | 第95-96页 |
| ·引物的设计 | 第96-98页 |
| ·质粒的构建 | 第98-104页 |
| ·Real-time PCR | 第98-100页 |
| ·DNA测序 | 第100页 |
| ·PCR产物的纯化与回收 | 第100-101页 |
| ·测序所得序列在Internet上使用NCBI服务器进行分析比对 | 第101页 |
| ·感受态大肠杆菌DH-5α的制备 | 第101页 |
| ·目的基因与载体的连接 | 第101-102页 |
| ·产物转化至感受态DH-5a | 第102-103页 |
| ·质粒DNA的快速提取 | 第103-104页 |
| ·荧光定量PCR | 第104-106页 |
| ·统计学方法 | 第106页 |
| 4. 结果 | 第106-114页 |
| ·总RNA的定量及纯度测定 | 第106-107页 |
| ·扩增S100A6、Rab5a基因,琼脂糖凝胶电泳检测扩增情况 | 第107-108页 |
| ·荧光定量PCR检测宫颈标本中S100A6和Rab5a mRNA的表达量 | 第108-110页 |
| ·PCR产物比对和所构建质粒的测序结果 | 第110-112页 |
| ·荧光定量PCR检测宫颈组织中S100A6 mRNA的表达阳性率 | 第112页 |
| ·荧光定量PCR检测宫颈组织中的Rab5a mRNA的表达阳性率 | 第112页 |
| ·荧光定量PCR检测宫颈组织中的S100A6 mRNA的表达量 | 第112-113页 |
| ·荧光定量PCR技术检测宫颈组织中的Rab5a mRNA的表达量 | 第113-114页 |
| 5. 讨论 | 第114-117页 |
| 6. 小结 | 第117-118页 |
| 第四章 免疫组化技术对宫颈癌S100A6和Rab5a蛋白检验并比较 | 第118-132页 |
| 1. 目的 | 第118-119页 |
| 2. 材料和方法 | 第119-123页 |
| ·原理 | 第119-121页 |
| ·材料 | 第121页 |
| ·主要试剂和设备 | 第121-122页 |
| ·Super PicTure法(一步法)免疫组化染色步骤 | 第122-123页 |
| 3. 结果判定 | 第123-124页 |
| 4. 结果 | 第124-129页 |
| ·组织免疫组化结果 | 第124-127页 |
| ·应用免疫组化检测标本组织中S100A6蛋白的表达情况 | 第127-128页 |
| ·应用免疫组化检测标本组织中Rab5a蛋白的表达情况 | 第128-129页 |
| 5. 讨论 | 第129-131页 |
| 6. 小结 | 第131-132页 |
| 参考文献 | 第132-145页 |
| 致谢 | 第145页 |
