| 个人简历 | 第3-6页 |
| 中文摘要 | 第6-9页 |
| 英文摘要 | 第9-12页 |
| 前言 | 第12-15页 |
| 1.实验材料 | 第15-18页 |
| 1.1 细胞系 | 第15页 |
| 1.2 主要试剂 | 第15-16页 |
| 1.3 主要仪器设备 | 第16页 |
| 1.4 主要试剂的配制 | 第16-18页 |
| 2.实验方法 | 第18-29页 |
| 2.1 细胞的培养 | 第18-20页 |
| 2.2 质粒的慢病毒包装 | 第20-21页 |
| 2.3 细胞系RNA的提取与保存 | 第21-22页 |
| 2.4 RNA的定量检测 | 第22-23页 |
| 2.5 TBC1D31敲低载体的构建 | 第23-24页 |
| 2.6 细胞生长曲线检测 | 第24页 |
| 2.7 CCK-8法检测细胞增殖抑制率 | 第24-25页 |
| 2.8 细胞克隆形成药物敏感性实验 | 第25-26页 |
| 2.9 裸鼠皮下成瘤药敏实验 | 第26-27页 |
| 2.10 组织样本总RNA的分离提取和保存 | 第27页 |
| 2.11 苏木精-伊红染色实验 | 第27页 |
| 2.12 免疫组化实验 | 第27-28页 |
| 2.13 实验结果的统计分析 | 第28-29页 |
| 3.实验结果 | 第29-44页 |
| 3.1 TBC1D31在不同细胞系中的表达检测 | 第29页 |
| 3.2 敲低TBC1D31肝癌细胞稳定株的鉴定 | 第29-30页 |
| 3.3 IC_(50)实验发现HCC-LM3细胞系的半数致死率浓度显著高于HepG2和Bel-7402细胞系 | 第30-33页 |
| 3.4 敲低TBC1D31促进肝癌细胞对Gefitinib的药物敏感性 | 第33-40页 |
| 3.5 敲低TBC1D31后Gefitinib显著抑制裸鼠皮下瘤生长 | 第40-42页 |
| 3.6 敲低TBC1D31后肿瘤组织中的EGFR活化程度和增殖能力显著降低 | 第42-44页 |
| 讨论 | 第44-48页 |
| 全文结论 | 第48-49页 |
| 附录 | 第49-52页 |
| 参考文献 | 第52-59页 |
| 综述 | 第59-81页 |
| 参考文献 | 第72-81页 |
| 致谢 | 第81-84页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第84页 |
