| 中文摘要 | 第9-13页 |
| ABSTRACT | 第13-16页 |
| 本论文主要创新点 | 第17-18页 |
| 第一章 绪论 | 第18-47页 |
| 1.1 引言 | 第18-19页 |
| 1.2 金纳米生物探针概述 | 第19-27页 |
| 1.2.1 金纳米粒子的合成 | 第19-20页 |
| 1.2.2 金纳米粒子的质量鉴定及表征 | 第20-22页 |
| 1.2.3 金纳米粒子的物化特性 | 第22-26页 |
| 1.2.3.1 尺寸依赖的电学和光电特性 | 第23页 |
| 1.2.3.2 荧光猝灭特性 | 第23-24页 |
| 1.2.3.3 催化性质 | 第24-26页 |
| 1.2.4 功能化的金纳米生物探针 | 第26-27页 |
| 1.3 金纳米生物探针的应用 | 第27-39页 |
| 1.3.1 比色分析法 | 第27-33页 |
| 1.3.1.1 非聚集比色法 | 第28页 |
| 1.3.1.2 聚集比色法 | 第28-30页 |
| 1.3.1.3 放大比色法 | 第30-33页 |
| 1.3.2 荧光分析方法 | 第33-36页 |
| 1.3.2.1 有机荧光染料 | 第34-35页 |
| 1.3.2.2 量子点 | 第35页 |
| 1.3.2.3 镧系金属荧光配合物 | 第35-36页 |
| 1.3.2.4 上转换发光粒子 | 第36页 |
| 1.3.3 比色和荧光双响应分析法 | 第36-37页 |
| 1.3.4 生物条形码检测技术 | 第37-38页 |
| 1.3.5 电化学及其他分析方法 | 第38-39页 |
| 1.4 本论文的主要研究工作 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-47页 |
| 第二章 基于金纳米粒子催化甲基橙还原的比色检测新方法 | 第47-61页 |
| 2.1 引言 | 第47-49页 |
| 2.2 实验部分 | 第49-51页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第49页 |
| 2.2.2 仪器 | 第49-50页 |
| 2.2.3 Apt15-PMPs的制备 | 第50页 |
| 2.2.4 Apt15-PMPs对甲基橙的催化还原活性 | 第50页 |
| 2.2.5 Apt29-AuNPs的制备 | 第50-51页 |
| 2.2.6 Apt29-AuNPs对甲基橙的催化还原活性 | 第51页 |
| 2.2.7 磁性三明治复合物的形成 | 第51页 |
| 2.2.8 放大比色检测方法的建立 | 第51页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第51-58页 |
| 2.3.1 金纳米粒子催化放大比色检测体系的设计与构建 | 第51-52页 |
| 2.3.2 Apt29-AuNPs催化活性的验证 | 第52-54页 |
| 2.3.3 Apt15-PMPs催化活性的验证 | 第54页 |
| 2.3.4 甲基橙催化还原反应的终止 | 第54-55页 |
| 2.3.5 蛋白质的放大比色检测 | 第55-58页 |
| 2.4 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-61页 |
| 第三章 基于金纳米粒子催化对硝基苯酚和亚甲基蓝还原的比色检测新方法 | 第61-80页 |
| 3.1 引言 | 第61-63页 |
| 3.2 实验部分 | 第63-66页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第63页 |
| 3.2.2 仪器 | 第63-64页 |
| 3.2.3 Apt15-PMPs对4-NP和MB的催化还原活性 | 第64页 |
| 3.2.4 SA-AuNPs和Apt29-AuNPs的制备 | 第64-65页 |
| 3.2.5 Apt29-AuNPs对4-NP、MB和HCF(Ⅲ)的催化还原活性 | 第65页 |
| 3.2.6 终点法放大比色检测方法的建立 | 第65-66页 |
| 3.2.7 动力学法放大比色检测方法的建立 | 第66页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第66-77页 |
| 3.3.1 “Turn-Off”模式放大比色检测体系的设计与基本原理 | 第66-68页 |
| 3.3.2 Apt29-AuNPs催化有色底物还原褪色的活性表征 | 第68-70页 |
| 3.3.3 Apt15-PMPs催化有色底物还原褪色的活性表征 | 第70-71页 |
| 3.3.4 有色底物的选择 | 第71-73页 |
| 3.3.5 4-NP催化还原褪色反应的终止与颜色恢复 | 第73-75页 |
| 3.3.6 蛋白质的终点法放大比色检测 | 第75页 |
| 3.3.7 蛋白质的动力学法放大比色检测 | 第75-77页 |
| 3.4 结论 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-80页 |
| 第四章 聚腺苷酸尾化适配体-金/银纳米探针的研究与应用 | 第80-92页 |
| 4.1 引言 | 第80-81页 |
| 4.2 实验部分 | 第81-83页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第81-82页 |
| 4.2.2 仪器 | 第82页 |
| 4.2.3 PolyA尾化DNA- AuNPs比色探针的制备 | 第82页 |
| 4.2.4 Biotin-PolyA-AuNPs探针用于SA的比色检测 | 第82-83页 |
| 4.2.5 Apt-PolyA-AuNPs探针用于凝血酶的比色检测 | 第83页 |
| 4.2.6 Apt44-PolyA-AgNPs探针的制备及PDGF-BB的比色检测 | 第83页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第83-90页 |
| 4.3.1 蛋白质均相比色检测的可行性 | 第83-84页 |
| 4.3.2 凝血酶检测探针的选择 | 第84-86页 |
| 4.3.3 检测探针浓度的优化 | 第86-88页 |
| 4.3.4 凝血酶的比色检测 | 第88页 |
| 4.3.5 PDGF-BB的比色检测 | 第88-90页 |
| 4.4 结论 | 第90页 |
| 参考文献 | 第90-92页 |
| 第五章 基于聚腺苷酸尾化适配体-金纳米荧光探针的荧光检测新方法 | 第92-108页 |
| 5.1 引言 | 第92-94页 |
| 5.2 实验部分 | 第94-96页 |
| 5.2.1 材料与试剂 | 第94页 |
| 5.2.2 仪器 | 第94-95页 |
| 5.2.3 PolyA尾化DNA-AuNPs/AgNPs复合物的制备 | 第95页 |
| 5.2.4 Biotin-PolyA-AuNPs/AgNPs探针的结合与分离 | 第95页 |
| 5.2.5 PolyA尾化DNA-AuNPs荧光探针的荧光激活 | 第95页 |
| 5.2.6 Apt-PolyA-AuNPs荧光探针用于蛋白质的荧光检测 | 第95-96页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第96-106页 |
| 5.3.1 蛋白质非均相检测的可行性 | 第96-98页 |
| 5.3.2 可激活型PolyA-AuNPs荧光探针的构建与荧光激活 | 第98-101页 |
| 5.3.3 基于可激活型Apt-PolyA-AuNPs探针的荧光分析 | 第101-103页 |
| 5.3.4 蛋白质的荧光“Turn-On”检测 | 第103-106页 |
| 5.4 结论 | 第106页 |
| 参考文献 | 第106-108页 |
| 第六章 基于金纳米荧光复合探针的荧光检测新方法 | 第108-126页 |
| 6.1 引言 | 第108-110页 |
| 6.2 实验部分 | 第110-112页 |
| 6.2.1 材料与试剂 | 第110页 |
| 6.2.2 仪器 | 第110页 |
| 6.2.3 金纳米荧光复合探针的制备 | 第110-111页 |
| 6.2.4 金纳米荧光复合探针的荧光激活 | 第111页 |
| 6.2.5 Apt15-AuNP-FITC复合探针用于凝血酶的荧光检测 | 第111-112页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第112-124页 |
| 6.3.1 基于可激活型金纳米荧光复合探针的荧光分析 | 第112-113页 |
| 6.3.2 异硫氰酸荧光染料的选择和金纳米荧光复合探针的制备 | 第113-116页 |
| 6.3.3 Apt15-AuNP-FITC荧光复合探针的激活策略 | 第116-120页 |
| 6.3.4 金纳米探针荧光恢复强度的浓度依赖性 | 第120-121页 |
| 6.3.5 蛋白质荧光检测的可行性 | 第121-122页 |
| 6.3.6 蛋白质的荧光“Turn-On”检测 | 第122-124页 |
| 6.4 结论 | 第124页 |
| 参考文献 | 第124-126页 |
| 附录 攻读博士学位期间已发表或待发表的论文 | 第126-128页 |
| 致谢 | 第128-129页 |
