| 中文摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 引言 | 第11-15页 |
| 1 补肾活血方主要化学成分的定性研究 | 第15-49页 |
| 1.1 实验材料 | 第15-17页 |
| 1.1.1 实验药材 | 第15-16页 |
| 1.1.2 实验仪器 | 第16页 |
| 1.1.3 实验试剂 | 第16页 |
| 1.1.4 对照品 | 第16-17页 |
| 1.2 实验方法 | 第17-21页 |
| 1.2.1 供试品溶液的制备 | 第17页 |
| 1.2.2 对照品溶液的制备 | 第17页 |
| 1.2.3 分析条件考察 | 第17-21页 |
| 1.2.4 检测条件 | 第21页 |
| 1.3 实验结果 | 第21-44页 |
| 1.3.1 补肾活血方主要色谱峰归属分析 | 第21-25页 |
| 1.3.2 补肾活血方主要色谱峰的定性鉴别 | 第25-33页 |
| 1.3.3 补肾活血方化合物结构推断 | 第33-44页 |
| 1.4 讨论 | 第44-48页 |
| 1.4.1 同分异构体的鉴别 | 第44-48页 |
| 1.4.2 条件优化 | 第48页 |
| 1.4.3 Q-Exactive质谱联用技术 | 第48页 |
| 1.5 小结 | 第48-49页 |
| 2 补肾活血方入血移行成分初步研究 | 第49-63页 |
| 2.1 实验材料 | 第49-50页 |
| 2.1.1 实验药材 | 第49页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第49页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第49页 |
| 2.1.4 对照品 | 第49-50页 |
| 2.1.5 实验动物 | 第50页 |
| 2.2 实验方法 | 第50-57页 |
| 2.2.1 给药溶液的配制 | 第50页 |
| 2.2.2 对照品溶液的配制 | 第50页 |
| 2.2.3 给药方案 | 第50页 |
| 2.2.4 血清样品的处理 | 第50-52页 |
| 2.2.5 取血时间的考察 | 第52-54页 |
| 2.2.6 给药剂量的考察 | 第54-56页 |
| 2.2.7 血清样品的制备 | 第56页 |
| 2.2.8 色谱条件 | 第56-57页 |
| 2.2.9 质谱条件 | 第57页 |
| 2.3 实验结果 | 第57-62页 |
| 2.3.1 补肾活血方入血成分图谱分析 | 第57-62页 |
| 2.4 讨论 | 第62页 |
| 2.5 小结 | 第62-63页 |
| 3 基于大鼠组织细胞水平对补肾活血方治疗DR作用机制的初步研究 | 第63-74页 |
| 3.1 实验材料 | 第63-64页 |
| 3.1.1 药物与试剂 | 第63-64页 |
| 3.1.2 实验动物 | 第64页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第64页 |
| 3.2 实验方法 | 第64-67页 |
| 3.2.1 分组与造模 | 第64-65页 |
| 3.2.2 给药方案 | 第65页 |
| 3.2.3 大鼠一般状态观察及体重测定 | 第65页 |
| 3.2.4 大鼠血糖测定 | 第65页 |
| 3.2.5 视网膜HE染色 | 第65-66页 |
| 3.2.6 视网膜VEGF、HIF-1α免疫组织化学染色 | 第66页 |
| 3.2.7 图像采集 | 第66页 |
| 3.2.8 统计方法 | 第66-67页 |
| 3.3 结果与结论 | 第67-72页 |
| 3.3.1 大鼠一般状态观察 | 第67页 |
| 3.3.2 大鼠体重及血糖 | 第67-68页 |
| 3.3.3 视网膜HE染色病理检测结果 | 第68-70页 |
| 3.3.4 视网膜VEGF、HIF-1α免疫组织化学染色 | 第70-72页 |
| 3.4 作用机制研究 | 第72-73页 |
| 3.5 讨论 | 第73页 |
| 3.5.1 造模方式的选择 | 第73页 |
| 3.5.2 模型动物的选择 | 第73页 |
| 3.6 小结 | 第73-74页 |
| 4 基于代谢组学技术对补肾活血方治疗DR作用机制的初步研究 | 第74-89页 |
| 4.1 实验材料 | 第74-75页 |
| 4.1.1 实验仪器 | 第74-75页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第75页 |
| 4.1.3 实验动物 | 第75页 |
| 4.2 方法 | 第75-77页 |
| 4.2.1 分组与DR造模制备 | 第75页 |
| 4.2.2 给药方案 | 第75页 |
| 4.2.3 尿液样品收集 | 第75页 |
| 4.2.4 大鼠尿液样品制备 | 第75-76页 |
| 4.2.5 UPLC-Q-ExactuveOrbitrap-MS分析条件 | 第76页 |
| 4.2.6 方法学验证 | 第76页 |
| 4.2.7 数据处理 | 第76-77页 |
| 4.3 结果与结论 | 第77-87页 |
| 4.3.1 方法学验证 | 第77页 |
| 4.3.2 大鼠尿液分析 | 第77-79页 |
| 4.3.3 模式识别分析 | 第79-81页 |
| 4.3.4 潜在生物标记物的筛选与鉴定 | 第81-83页 |
| 4.3.5 补肾活血方治疗DR的尿液代谢组学研究 | 第83-84页 |
| 4.3.6 DR模型可能引起的代谢通路改变 | 第84-87页 |
| 4.4 讨论 | 第87-89页 |
| 4.4.1 研究对象及处理 | 第87-88页 |
| 4.4.2 PCA与PLS-DA分析 | 第88-89页 |
| 全文总结 | 第89-93页 |
| 参考文献 | 第93-97页 |
| 文献综述 | 第97-115页 |
| 参考文献 | 第110-115页 |
| 致谢 | 第115-116页 |
| 附件1：在读期间公开发表的学术论文、专著及科研成果 | 第116-117页 |
