| 中文摘要 | 第6-9页 |
| 英文摘要 | 第9-11页 |
| 常用缩写词中英文对照表 | 第12-14页 |
| 前言 | 第14-17页 |
| 第一部分：CNPY2 在结直肠癌患者的表达水平研究 | 第17-32页 |
| 1 材料与方法 | 第17-28页 |
| 1.1 试剂与仪器设备 | 第17-19页 |
| 1.2 常用溶液配方 | 第19-21页 |
| 1.3 实验方法 | 第21-28页 |
| 2 结果 | 第28-31页 |
| 2.1 临床结肠癌患者癌组织与癌旁正常组织CNPY2 水平检测结果 | 第28-29页 |
| 2.2 结肠癌患者血浆与正常健康人血浆中的CNPY2 水平检测结果 | 第29-31页 |
| 3 结论 | 第31-32页 |
| 第二部分：构建shRNAs稳定转染HCT116 细胞系 | 第32-44页 |
| 1 材料与方法 | 第32-40页 |
| 1.1 试剂与仪器设备 | 第32-35页 |
| 1.2 常用溶液配方 | 第35-37页 |
| 1.3 实验方法 | 第37-40页 |
| 2 结果 | 第40-43页 |
| 2.1 pRFP-C-RS-shRNA质粒图 | 第40页 |
| 2.2 荧光显微镜下转染细胞RFP表达情况 | 第40页 |
| 2.3 knockdown CNPY2 后，HCT116shRNA-CNPY2 细胞CNPY2 mRNA表达结果 | 第40-41页 |
| 2.4 knockdown CNPY2 后， HCT116shRNA-CNPY2 细胞CNPY2 蛋白的表达结果 | 第41-42页 |
| 2.5 HCT116sh RNA-control细胞和HCT116sh RNA-CNPY2 细胞中上清CNPY2 水平 | 第42-43页 |
| 3 结论 | 第43-44页 |
| 第三部分：体外CNPY2 对HCT116 细胞部分生物学活性的影响 | 第44-53页 |
| 1 材料与方法 | 第44-48页 |
| 1.1 试剂与仪器设备 | 第44-45页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第45页 |
| 1.3 常用溶液配方 | 第45-46页 |
| 1.4 实验方法 | 第46-48页 |
| 2 结果 | 第48-52页 |
| 2.1 knockdown CNPY2 后影响细胞的生长的结果 | 第48-49页 |
| 2.2 knockdown CNPY2 后导致HCT116 细胞迁移明显减慢 | 第49页 |
| 2.3 knockdown CNPY2 后导致HCT116 细胞凋亡的增加 | 第49-52页 |
| 3 结论 | 第52-53页 |
| 第四部分：CNPY2 在裸鼠移植瘤生长和发展的作用研究 | 第53-65页 |
| 1 材料与方法 | 第53-58页 |
| 1.1 试剂与仪器设备 | 第53-55页 |
| 1.2 常用溶液配方 | 第55-56页 |
| 1.3 实验方法 | 第56-58页 |
| 2 结果 | 第58-62页 |
| 2.1 裸鼠移植瘤图 | 第58页 |
| 2.2 裸鼠移植瘤的CNPY2 水平 | 第58-59页 |
| 2.3 knockdown CNPY2 后对移植瘤的体积和重量的影响 | 第59页 |
| 2.4 knockdown CNPY2 后导致移植瘤的增殖和血管生成减弱，凋亡增加 | 第59-62页 |
| 3 结论 | 第62-63页 |
| 4 讨论 | 第63-65页 |
| 参考文献 | 第65-69页 |
| 综述 | 第69-78页 |
| 参考文献 | 第74-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
| 在学期间承担/参与的科研与研究成果 | 第79-80页 |
| 个人简历 | 第80页 |
