| 摘要 | 第2-3页 |
| Abstract | 第3页 |
| 引言 | 第6-8页 |
| 第一章 实验材料 | 第8-10页 |
| 1.1 主要试剂与材料 | 第8-9页 |
| 1.2 细胞株 | 第9页 |
| 1.3 仪器设备 | 第9-10页 |
| 第二章 实验方法 | 第10-18页 |
| 2.1 人脐静脉内皮细胞(HUVECs)的传代培养 | 第10页 |
| 2.2 预实验筛选ox-LDL造模浓度以及OA保护作用浓度以及最佳预保护时间 | 第10-11页 |
| 2.2.1 ox-LDL诱导的HUVECs氧化损伤模型的建立 | 第10-11页 |
| 2.2.2 不同浓度OA对HUVECs的直接影响 | 第11页 |
| 2.2.3 OA预保护时间的筛选 | 第11页 |
| 2.3 实验分组及ox-LDL处理 | 第11页 |
| 2.4 实验项目及检测指标 | 第11-18页 |
| 2.4.1 OA对HUVECs氧化损伤的保护作用 | 第11-12页 |
| 2.4.2 各组细胞中NO、NOS、CAT、GSH-PX活性或含量的测定 | 第12页 |
| 2.4.3 电子自旋共振（ESR）同时检测各组细胞中一氧化氮(NO)以及活性氧（ROS）含量 | 第12页 |
| 2.4.4 免疫印迹Western blot | 第12-14页 |
| 2.4.5 荧光定量PCR(Real-time PCR) | 第14-17页 |
| 2.4.6 siRNA脂质体转染 | 第17-18页 |
| 2.5 统计学分析 | 第18页 |
| 第三章 实验结果 | 第18-31页 |
| 3.1 CCK-8 法筛选ox-LDL造模浓度以及齐墩果酸细胞毒性 | 第18-19页 |
| 3.2 不同浓度齐墩果酸预处理不同时间对HUVECs存活率的影响 | 第19-20页 |
| 3.3 齐墩果酸对氧化损伤的HUVECs存活率的影响 | 第20页 |
| 3.4 OA对细胞内NO、NOS、CAT、GSH-PX活性或含量影响 | 第20-21页 |
| 3.5 ESR同时捕捉检测各组细胞内ROS及NO含量 | 第21-22页 |
| 3.6 OA对ox-LDL损伤的HUVECs内TBX20、PPARγ、PON2蛋白以及mRNA表达的影响 | 第22-28页 |
| 3.7 TBX20-siRNA转染效率检测 | 第28-29页 |
| 3.8 TBX20 siRNA转染后HUVECs内TBX20、PPARγ蛋白含量检测 | 第29-31页 |
| 第四章 讨论 | 第31-37页 |
| 结论 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-44页 |
| 综述 | 第44-62页 |
| 综述的参考文献 | 第54-62页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
