| 致谢 | 第6-7页 |
| 摘要 | 第7-8页 |
| ABSTRACT | 第8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-19页 |
| 1.1 课题的提出 | 第13-14页 |
| 1.2 给水管网中微生物聚集行为的研究现状 | 第14-18页 |
| 1.2.1 管网生物膜的形成过程及其特性 | 第14页 |
| 1.2.2 影响管网中生物膜形成的因素 | 第14-18页 |
| 1.2.3 研究存在问题和不足 | 第18页 |
| 1.3 本文的主要研究内容及意义 | 第18-19页 |
| 第二章 水中余氯对给水管网微生物表面附着行为的影响 | 第19-31页 |
| 2.1 引言 | 第19-20页 |
| 2.2 实验材料与方法 | 第20-24页 |
| 2.2.1 样品的制备 | 第20页 |
| 2.2.2 实验步骤 | 第20-21页 |
| 2.2.3 微生物表面附着量的测定 | 第21页 |
| 2.2.4 细菌的死活染色 | 第21-22页 |
| 2.2.5 微生物表面附着动力学模型的建立 | 第22-24页 |
| 2.3 实验结果 | 第24-29页 |
| 2.3.1 在不同氯浓度下的微生物的表面附着 | 第24-25页 |
| 2.3.2 氯对附着微生物的活性的影响 | 第25-26页 |
| 2.3.3 不同氯浓度下微生物表面附着的模抵结果 | 第26-27页 |
| 2.3.4 不同氯浓度下微生物聚集情况的模拟结果 | 第27-28页 |
| 2.3.5 氯的分布与变化以及对微生物运动的影响 | 第28-29页 |
| 2.4 讨论 | 第29-31页 |
| 第三章 水中余氯对给水管网微生物的表面聚集和EPS分泌的影响 | 第31-44页 |
| 3.1 引言 | 第31-32页 |
| 3.2 实验材料和方法 | 第32-36页 |
| 3.2.1 水样的准备和溶液的配置 | 第32页 |
| 3.2.2 实验步骤 | 第32-33页 |
| 3.2.3 提取和再悬浮生物膜中的微生物 | 第33页 |
| 3.2.4 EPS的提取和化学测试方法 | 第33页 |
| 3.2.5 异养菌平皿计数(HPC) | 第33-34页 |
| 3.2.6 死活菌染色方法 | 第34页 |
| 3.2.7 TOC分析 | 第34页 |
| 3.2.8 表面电荷 | 第34-35页 |
| 3.2.9 EPS去除实验 | 第35-36页 |
| 3.3 实验结果 | 第36-42页 |
| 3.3.1 在不同氯浓度下微生物分泌的EPS的量 | 第36-37页 |
| 3.3.2 不同氯浓度下悬浮细胞的表面电荷 | 第37-38页 |
| 3.3.3 不同氯浓度下载片上的生物量 | 第38-39页 |
| 3.3.4 不同氯浓度下载片上的微生物的死活分布 | 第39-40页 |
| 3.3.5 EPS去除后对微生物聚集行为的影响 | 第40-42页 |
| 3.4 讨论 | 第42-44页 |
| 第四章 水流流速对给水管网生物膜初期形成和膜内EPS含量的影响 | 第44-51页 |
| 4.1 引言 | 第44-45页 |
| 4.2 实验设备和方法 | 第45-46页 |
| 4.2.1 实验系统 | 第45-46页 |
| 4.2.2 提取和再悬浮生物膜中的微生物 | 第46页 |
| 4.2.3 分析方法 | 第46页 |
| 4.3 结果 | 第46-49页 |
| 4.3.1 水质变化 | 第46-47页 |
| 4.3.2 不同流速下管道内壁HPC | 第47-48页 |
| 4.3.3 不同流速条件下管段内壁上的总细胞浓度 | 第48页 |
| 4.3.4 EPS的含量和生物膜生长速率随流速的变化 | 第48-49页 |
| 4.4 讨论 | 第49-51页 |
| 第五章 结论与展望 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-62页 |
| 攻读硕士学位期间的学术活动及成果清单 | 第62页 |
