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FOXG1的表达与人恶性神经胶质瘤的相关性研究

摘要第2-4页
Abstract第4-5页
引言第8-10页
第一章 实验材料第10-12页
    1.1 主要材料第10-12页
        1.1.1 主要实验仪器第10-11页
        1.1.2 菌株与细胞株第11页
        1.1.3 主要实验试剂第11-12页
第二章 主要实验方法第12-26页
    2.1 重组质粒的扩增、提取及鉴定第12-14页
        2.1.1 重组质粒的扩增第12页
        2.1.2 重组质粒的提取第12-13页
        2.1.3 重组质粒的鉴定第13-14页
    2.2 U118细胞的培养第14-17页
        2.2.1 U118细胞的复苏第15页
        2.2.2 U118细胞的培养与传代第15页
        2.2.3 U118细胞的冻存第15页
        2.2.4 U118细胞脂质体转染及转染效率的测定第15-16页
            2.2.4.1 脂质体转染流程第15-16页
            2.2.4.2 转染效率的测定第16页
        2.2.5 G418筛选稳定转染细胞系第16-17页
            2.2.5.1 确定G418最佳筛选浓度第16页
            2.2.5.2 筛选稳定转染细胞系第16-17页
    2.3 免疫组织化学第17-18页
    2.4 RT-PCR反应第18-20页
        2.4.1 总RNA提取第19页
        2.4.2 反转录反应第19-20页
        2.4.3 PCR反应第20页
    2.5 MTT检测细胞增殖第20-21页
    2.6 Western Blot第21-24页
        2.6.1 提取细胞总蛋白第21页
        2.6.2 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳第21-22页
        2.6.3 电转印第22-23页
        2.6.4 封闭第23页
        2.6.5 孵育抗体第23-24页
        2.6.6ECL化学发光第24页
    2.7 功能检测第24-25页
        2.7.1 U118细胞脂质体转染及稳定转染细胞系的建立第24页
        2.7.2 采用RT-PCR和Western-Biot方法检各组细胞U118的表达第24页
        2.7.3 MTT检测细胞增殖第24页
        2.7.4 流式细胞术检测细胞凋亡第24-25页
    2.8 统计学方法第25-26页
第三章 实验结果第26-34页
    3.1 重组质粒的鉴定第26页
    3.2 U118细胞的培养第26页
    3.3 U118脂质体转染第26-27页
        3.3.1 FOXG1干扰质粒U118细胞第26-27页
    3.4 稳定转染U118细胞系的筛选第27页
    3.5 MTT检测U118细胞增殖第27-28页
    3.6 Western-Blot检测FOXG1的表达第28-29页
    3.7 流式细胞术检测U118细胞凋亡第29-30页
    3.8 RT-PCR检测FOXG1基因的表达第30-31页
    3.9 免疫组化对FOXG1基因的检测表达第31-34页
讨论第34-35页
结论第35-36页
附录第36-39页
参考文献第39-41页
综述第41-48页
    综述参考文献第45-48页
攻读学位期间的研究成果第48-49页
缩略语表第49-50页
致谢第50-51页

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