| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第11-14页 |
| 前言 | 第14-20页 |
| 研究现状、成果 | 第14-18页 |
| 研究目的、方法 | 第18-20页 |
| 一、循环血中BDMP在颅脑创伤小鼠中的促凝作用 | 第20-30页 |
| 1.1 对象和方法 | 第20-23页 |
| 1.1.1 实验动物、主要仪器 | 第20页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第20-21页 |
| 1.1.3 实验方法 | 第21-23页 |
| 1.1.4 统计分析 | 第23页 |
| 1.2 结果 | 第23-27页 |
| 1.2.1 颅脑创伤小鼠循环血中GFAP和NSE阳性MP的表达 | 第23-26页 |
| 1.2.2 BDMP在颅脑创伤小鼠中的促凝作用 | 第26-27页 |
| 1.3 讨论 | 第27-29页 |
| 1.4 小结 | 第29-30页 |
| 二、体外制备并鉴定BDMP的形态、表型及促凝活性 | 第30-58页 |
| 2.1 对象和方法 | 第30-42页 |
| 2.1.1 实验动物、主要仪器 | 第30-31页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第31-34页 |
| 2.1.3 实验方法 | 第34-42页 |
| 2.1.4 统计分析 | 第42页 |
| 2.2 结果 | 第42-54页 |
| 2.2.1 神经元细胞和胶质细胞的形态学鉴定 | 第42-43页 |
| 2.2.2 BDMP的流式细胞仪鉴定 | 第43-47页 |
| 2.2.3 透射电镜下BDMP的形态学鉴定 | 第47-48页 |
| 2.2.4 BDMP的Western Blot鉴定 | 第48-49页 |
| 2.2.5 BDMP的体外促凝作用 | 第49-52页 |
| 2.2.6 BDMP的体内促凝作用 | 第52-54页 |
| 2.3 讨论 | 第54-57页 |
| 2.3.1 BDMP的体外制备及鉴定 | 第54-56页 |
| 2.3.2 BDMP的促凝作用 | 第56-57页 |
| 2.4 小结 | 第57-58页 |
| 三、BDMP与血小板相互作用的体外研究 | 第58-74页 |
| 3.1 对象和方法 | 第58-64页 |
| 3.1.1 实验动物、主要仪器 | 第58-59页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第59-60页 |
| 3.1.3 实验方法 | 第60-64页 |
| 3.1.4 统计分析 | 第64页 |
| 3.2 结果 | 第64-71页 |
| 3.2.1 BDMP在血小板的介导下能穿过激活的HUVEC细胞 | 第64-66页 |
| 3.2.2 BDMP能够与血小板结合 | 第66-68页 |
| 3.2.3 BDMP增加血小板表面PS的表达 | 第68-70页 |
| 3.2.4 BDMP能够促进血小板的活化 | 第70-71页 |
| 3.2.5 BDMP促进血小板的钙离子内流 | 第71页 |
| 3.3 讨论 | 第71-73页 |
| 3.4 小结 | 第73-74页 |
| 四、BDMP清除机制的体外研究 | 第74-81页 |
| 4.1 对象和方法 | 第74-76页 |
| 4.1.1 实验动物、主要仪器 | 第74页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第74-75页 |
| 4.1.3 实验方法 | 第75-76页 |
| 4.1.4 统计分析 | 第76页 |
| 4.2 结果 | 第76-79页 |
| 4.2.1 Lactadherin蛋白抑制BDMP的促凝作用 | 第76-77页 |
| 4.2.2 Lactadherin能够与BDMP结合 | 第77-79页 |
| 4.3 讨论 | 第79-80页 |
| 4.4 小结 | 第80-81页 |
| 全文结论 | 第81-82页 |
| 论文创新点 | 第82-83页 |
| 参考文献 | 第83-91页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第91-94页 |
| 综述 | 第94-116页 |
| 综述参考文献 | 第100-116页 |
| 致谢 | 第116-117页 |
