| 论文摘要 | 第6-7页 |
| ABSTRACT | 第7页 |
| 第一章 腹腔注射生胃酮或甲氟喹对于大鼠神经病理性疼痛的预防作用 | 第12-33页 |
| 前言 | 第13-14页 |
| 1 实验材料和方法 | 第14-19页 |
| 1.1 实验所需溶液的配置 | 第14-15页 |
| 1.2 主要实验仪器 | 第15-16页 |
| 1.3 大鼠疼痛模型的建立 | 第16-17页 |
| 1.3.1 假手术(sham) | 第16-17页 |
| 1.3.2 坐骨神经慢性压迫模型 | 第17页 |
| 1.3.3 坐骨神经分支选择损伤模型 | 第17页 |
| 1.4 疼痛行为学测定 | 第17-18页 |
| 1.4.1 机械触诱发痛测试 | 第17-18页 |
| 1.4.2 热痛觉过敏测试 | 第18页 |
| 1.5 开场实验 | 第18-19页 |
| 1.6 转棒实验 | 第19页 |
| 1.7 实验数据分析 | 第19页 |
| 2 结果 | 第19-21页 |
| 2.1 腹腔注射Cbx或Meflo可预防CCI术后神经病理性疼痛的形成 | 第19-20页 |
| 2.2 腹腔注射Meflo缓解CCI手术诱导神经病理性疼痛时间窗 | 第20页 |
| 2.3 腹腔注射Cbx或Meflo不影响正常大鼠对疼痛的感知能力 | 第20页 |
| 2.4 腹腔注射Cbx或Meflo不影响大鼠的运动平衡能力和焦虑水平 | 第20-21页 |
| 2.5 腹腔注射Cbx或Meflo可预防SNI手术诱导神经病理性疼痛 | 第21页 |
| 3 讨论 | 第21-23页 |
| 版图与说明 | 第23-33页 |
| 第二章 前扣带皮层埋管注射甲氟喹对大鼠神经病理性疼痛的预防作用 | 第33-44页 |
| 前言 | 第34页 |
| 1 实验材料和方法 | 第34-37页 |
| 1.1 实验所需溶液的配置 | 第35页 |
| 1.2 主要实验仪器 | 第35页 |
| 1.3 大鼠疼痛模型的建立 | 第35页 |
| 1.3.1 假手术(sham) | 第35页 |
| 1.3.2 坐骨神经慢性压迫模型CCI | 第35页 |
| 1.4 疼痛行为学测定 | 第35页 |
| 1.4.1 机械触诱发痛测试 | 第35页 |
| 1.4.2 热痛觉过敏测试 | 第35页 |
| 1.5 前扣带皮层埋管注射 | 第35-36页 |
| 1.6 实时荧光定量PCR(RT-PCR) | 第36-37页 |
| 1.7 蛋白印迹(Western blot) | 第37页 |
| 1.8 实验数据分析 | 第37页 |
| 2 结果 | 第37-38页 |
| 2.1 神经损伤可导致ACC区域Cx36的表达增加 | 第37-38页 |
| 2.2 ACC局部埋管注射Meflo可预防神经病理性疼痛形成 | 第38页 |
| 3 讨论 | 第38-40页 |
| 版图与说明 | 第40-44页 |
| 第三章 前扣带皮层局部干扰甲氟喹靶点Cx36表达对大鼠神经病理性疼痛的预防作用 | 第44-55页 |
| 前言 | 第45-46页 |
| 1 实验材料和方法 | 第46-48页 |
| 1.1 实验所需溶液的配置 | 第46页 |
| 1.2 主要实验仪器 | 第46页 |
| 1.3 RNA干扰ACC区域Cx36表达下调大鼠模型的建立 | 第46-47页 |
| 1.4 蛋白印迹 | 第47页 |
| 1.5 免疫组织化学 | 第47页 |
| 1.6 坐骨神经慢性压迫模型 | 第47页 |
| 1.7 疼痛行为学测定 | 第47页 |
| 1.7.1 机械触诱发痛测试 | 第47页 |
| 1.7.2 热痛觉过敏测试 | 第47页 |
| 1.8 实验数据分析 | 第47-48页 |
| 2 结果 | 第48页 |
| 2.1 RNA干扰ACC脑区Cx36表达下调大鼠模型的建立 | 第48页 |
| 2.2 ACC区域的Cx36表达下调可预防神经病理性疼痛形成 | 第48页 |
| 3. 讨论 | 第48-50页 |
| 版图与说明 | 第50-55页 |
| 第四章 文献综述：神经病理性疼痛 | 第55-61页 |
| 前言 | 第55页 |
| 1 发病机制 | 第55-56页 |
| 2 神经病理性疼痛动物模型 | 第56-58页 |
| 3. 神经病理性疼痛的治疗手段 | 第58-60页 |
| 3.1 药物治疗 | 第58-59页 |
| 3.2 手术治疗 | 第59-60页 |
| 4. 小结 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
