| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 目录 | 第11-14页 |
| 主要英文缩写词表 | 第14-16页 |
| 1 引言 | 第16-22页 |
| 1.1 免疫调节与 T 细胞活化 | 第16-18页 |
| 1.2 蛋白 4.1 家族 | 第18-19页 |
| 1.3 蛋白 4.1R 与 CD8~+T 淋巴细胞 | 第19-20页 |
| 1.4 4.1R 基因敲除小鼠模型 | 第20-22页 |
| 2 4.1R 基因敲除小鼠的饲养、繁殖及 CD8+ T 细胞中 4.1R 基因克隆 | 第22-37页 |
| 2.1 材料与方法 | 第22-25页 |
| 2.1.1 主要仪器 | 第22-23页 |
| 2.1.2 主要药品与试剂 | 第23-24页 |
| 2.1.3 常用实验溶液以及大肠杆菌培养基的配制 | 第24-25页 |
| 2.1.4 引物的设计及合成 | 第25页 |
| 2.1.5 实验动物 | 第25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-32页 |
| 2.2.1 小鼠的饲养环境 | 第25-26页 |
| 2.2.2 小鼠的生长状态观察 | 第26页 |
| 2.2.3 小鼠的配对繁殖和保种 | 第26页 |
| 2.2.4 从小鼠 CD8~+T 淋巴细胞中克隆 4.1R 基因 | 第26-32页 |
| 2.3 结果 | 第32-36页 |
| 2.3.1 目前 4.1R 基因敲除小鼠的繁育情况 | 第32页 |
| 2.3.2 4.1R 开放阅读框的获得 | 第32-33页 |
| 2.3.3 重组质粒的构建 | 第33-36页 |
| 2.4 讨论 | 第36-37页 |
| 3 蛋白 4.1 R 对 CD8~+T 淋巴细胞的活化、增殖和功能的影响 | 第37-64页 |
| 3.1 仪器和材料 | 第38-42页 |
| 3.1.1 主要仪器 | 第38-39页 |
| 3.1.2 主要药品与试剂 | 第39-40页 |
| 3.1.3 主要工作液及配置 | 第40-41页 |
| 3.1.4 细胞株 | 第41-42页 |
| 3.1.5 实验动物 | 第42页 |
| 3.2 方法 | 第42-53页 |
| 3.2.1 CD8~+T 淋巴细胞的纯化及培养 | 第42-43页 |
| 3.2.2 流式检测 CD8~+T 淋巴细胞的纯度 | 第43页 |
| 3.2.3 4.1R 基因敲除对小鼠 CD8~+T 淋巴细胞活化后细胞表面的 CD69 分子表达的影响 | 第43页 |
| 3.2.4 4.1R 基因敲除对小鼠 CD8~+T 淋巴细胞增殖的影响 | 第43-45页 |
| 3.2.5 4.1R 基因敲除对小鼠 CD8~+T 淋巴细胞周期的影响 | 第45-46页 |
| 3.2.6 4.1R 基因敲除对小鼠 CD8~+T 淋巴细胞活化后细胞因子产生的影响 | 第46-48页 |
| 3.2.7 4.1R 敲除对 CD8~+T 淋巴细胞的蛋白 LAT、ERK 的磷酸化水平的影响 | 第48-51页 |
| 3.2.8 4.1R~(+/+)和 4.1R~(-/-)小鼠体内成瘤实验 | 第51-52页 |
| 3.2.9 统计学分析处理 | 第52-53页 |
| 3.3 结果 | 第53-62页 |
| 3.3.1 流式检测 CD8~+T 细胞的纯度 | 第53页 |
| 3.3.2 4.1R 基因敲除对小鼠 CD8~+T 淋巴细胞活化后 CD69 表达的影响 | 第53-55页 |
| 3.3.3 4.1R 基因敲除对小鼠 CD8~+T 淋巴细胞增殖的影响 | 第55-56页 |
| 3.3.4 4.1R 基因敲除对小鼠 CD8~+T 淋巴细胞周期的影响 | 第56-57页 |
| 3.3.5 4.1R 基因敲除对小鼠 CD8~+T 淋巴细胞活化后细胞因子产生的影响 | 第57-59页 |
| 3.3.6 4.1R 敲除对 CD8~+T 淋巴细胞的 TCR/CD3 下游信号蛋白 LAT、ERK 的磷酸化水平的影响 | 第59-60页 |
| 3.3.7 4.1R~(+/+)和 4.1R~(-/-)小鼠体内成瘤实验 | 第60-62页 |
| 3.4 讨论 | 第62-64页 |
| 4 结论 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-71页 |
| 硕士期间发表论文、专利目录及研究成果 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72页 |
