摘要 | 第8-10页 |
Abstract | 第10-11页 |
前言 | 第12-14页 |
材料和方法 | 第14-23页 |
1. 材料 | 第14-16页 |
1.1 细胞 | 第14页 |
1.2 药品及试剂 | 第14-15页 |
1.3 实验仪器 | 第15-16页 |
2. 实验方法 | 第16-23页 |
2.1 细胞培养 | 第16页 |
2.2 MTT 法测定细胞活力 | 第16页 |
2.3 AO/EB 双荧光染色分析 | 第16页 |
2.4 DAPI 染色分析 | 第16页 |
2.5 细胞内 ROS 水平测定 | 第16-17页 |
2.6 细胞内 Ca2+浓度测定 | 第17页 |
2.7 细胞内NO和iNOS含量测定 | 第17页 |
2.8 细胞周期检测 | 第17页 |
2.9 透射电镜分析 | 第17页 |
2.10 彗星电泳分析 | 第17页 |
2.11 TUNEL检测 | 第17-18页 |
2.12 蛋白样品的制备和iTRAQ标记 | 第18-19页 |
2.13 强阳离子交换色谱法分离 | 第19-20页 |
2.14 Nano-LC-MS/MS分析 | 第20页 |
2.15 蛋白质鉴定 | 第20-21页 |
2.16 蛋白质组数据生物信息学分析 | 第21页 |
2.17 Western blot 分析 | 第21-22页 |
2.18 Real-time PCR 分析 | 第22-23页 |
3. 数据统计 | 第23页 |
结果 | 第23-52页 |
1. 薯蓣皂苷对结肠癌细胞药效学研究 | 第23-32页 |
1.1 薯蓣皂苷对六种细胞的生长抑制作用 | 第23-24页 |
1.2 薯蓣皂苷对细胞形态的影响 | 第24-27页 |
1.3 薯蓣皂苷对 HCT-116 细胞内 ROS、Ca2+、NO 和 iNOS 水平的影响 | 第27-28页 |
1.4 薯蓣皂苷对HCT-116细胞超微结构的影响 | 第28-29页 |
1.5 薯蓣皂苷对 HCT-116 细胞周期的影响 | 第29-30页 |
1.6 薯蓣皂苷诱导 HCT-116 细胞 DNA 损伤 | 第30-32页 |
1.7 薯蓣皂苷诱导 HCT-116 细胞凋亡 | 第32页 |
2. 薯蓣皂苷诱导 HCT-116 细胞系统生物学分析 | 第32-52页 |
2.1 蛋白组学分析 | 第32-46页 |
2.2 差异蛋白的分类 | 第46-51页 |
2.3 差异蛋白的验证 | 第51-52页 |
讨论 | 第52-54页 |
结论 | 第54-55页 |
参考文献 | 第55-60页 |
综述 | 第60-76页 |
参考文献 | 第69-76页 |
附录 | 第76-77页 |
攻读学位期间发表论文 | 第77-78页 |
致谢 | 第78-79页 |