| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 缩略语/符号说明 | 第14-16页 |
| 前言 | 第16-19页 |
| 研究现状、成果 | 第16-18页 |
| 研究目的、方法 | 第18-19页 |
| 一、ADT激活TGF-β1信号通路 | 第19-27页 |
| 1.1 对象和方法 | 第19-22页 |
| 1.1.1 肿瘤标本 | 第19页 |
| 1.1.2 实验试剂 | 第19-20页 |
| 1.1.3 实验仪器 | 第20页 |
| 1.1.4 主要试剂溶液的配制 | 第20页 |
| 1.1.5 实验方法 | 第20-22页 |
| 1.2 结果 | 第22-24页 |
| 1.2.1 患者信息 | 第22-23页 |
| 1.2.2 免疫组化检测TGF-β1的表达水平 | 第23-24页 |
| 1.3 讨论 | 第24-26页 |
| 1.4 小结 | 第26-27页 |
| 二、TGF-β1诱导EMT发生的同时增加了CD44的表达 | 第27-39页 |
| 2.1 对象和方法 | 第27-35页 |
| 2.1.1 细胞株 | 第27页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第27-28页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第28-30页 |
| 2.1.4 主要试剂溶液的配制 | 第30-32页 |
| 2.1.5 实验方法 | 第32-35页 |
| 2.2 结果 | 第35-36页 |
| 2.2.1 Western blot检测LNCaP和CWR22RV1细胞经TGF-β1作用后CD44的表达变化 | 第36页 |
| 2.2.2 Western blot检测LNCaP和CWR22RV1细胞经TGF-β E-cadherin和Vimentin的表达变化 | 第36页 |
| 2.3 讨论 | 第36-38页 |
| 2.4 小结 | 第38-39页 |
| 三、TGF-β 1通过上调CD44的表达诱导EMT的发生 | 第39-44页 |
| 3.1 对象和方法 | 第39-40页 |
| 3.1.1 细胞株 | 第39页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第39页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第39-40页 |
| 3.1.4 主要试剂溶液的配制 | 第40页 |
| 3.1.5 实验方法 | 第40页 |
| 3.2 结果 | 第40-42页 |
| 3.2.1 阻断TGF-β信号通路后CD44的检测 | 第40-41页 |
| 3.2.2 CD44敲除效率的检测 | 第41页 |
| 3.2.3 EMT标记物的检测 | 第41-42页 |
| 3.3 讨论 | 第42-43页 |
| 3.4 小结 | 第43-44页 |
| 四、前列腺癌鼠模型建立和体内靶向抑制CD44阻碍前列腺癌转移 | 第44-53页 |
| 4.1 对象和方法 | 第44-47页 |
| 4.1.1 细胞株 | 第44页 |
| 4.1.2 实验试剂及材料 | 第44页 |
| 4.1.3 实验仪器 | 第44-45页 |
| 4.1.4 主要试剂溶液的配制 | 第45页 |
| 4.1.5 实验方法 | 第45-47页 |
| 4.2 结果 | 第47-51页 |
| 4.2.1 盐霉素对CD44的抑制作用 | 第47页 |
| 4.2.2 前列腺癌鼠模型的建立 | 第47-48页 |
| 4.2.3 盐霉素对前列腺癌转移的抑制作用 | 第48-50页 |
| 4.2.4 转移灶免疫组化结果 | 第50-51页 |
| 4.2.5 前列腺癌模型鼠原位肿瘤免疫组化结果 | 第51页 |
| 4.3 讨论 | 第51-52页 |
| 4.4 小结 | 第52-53页 |
| 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-58页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第58-59页 |
| 综述 前列腺癌与上皮间质转化 | 第59-69页 |
| 综述参考文献 | 第64-69页 |
| 致谢 | 第69页 |
