摘要 | 第5-8页 |
ABSTRACT | 第8-10页 |
目录 | 第11-14页 |
第一章 绪论 | 第14-29页 |
1.1 传统样品前处理方法 | 第14-16页 |
1.1.1 湿法消化法 | 第14页 |
1.1.2 干法灰化法 | 第14-15页 |
1.1.3 高压辅助法 | 第15页 |
1.1.4 超声辅助法 | 第15-16页 |
1.1.5 酶消化法 | 第16页 |
1.2 微波消解样品前处理技术及特点 | 第16-18页 |
1.2.1 微波消解原理 | 第16-17页 |
1.2.2 微波消解分类 | 第17页 |
1.2.3 微波消解用于样品前处理的特点 | 第17-18页 |
1.3 近期样品前处理分析技术进展 | 第18-19页 |
1.3.1 臭氧氧化技术 | 第18页 |
1.3.2 光催化氧化技术 | 第18-19页 |
1.4 芬顿(FENTON)催化反应用于样品预处理 | 第19-24页 |
1.4.1 芬顿催化氧化反应基本原理 | 第19-20页 |
1.4.2 芬顿反应的分类 | 第20-21页 |
1.4.3 基于纳米沸石的芬顿反应 | 第21-24页 |
1.5 实际血液样品组成及其样品前处理 | 第24-27页 |
1.5.1 血液组成成分 | 第24-26页 |
1.5.2 血液样品前处理研究现状 | 第26-27页 |
1.6 本论文研究工作 | 第27-29页 |
1.6.1 本论文主要研究内容 | 第27-28页 |
1.6.2 本论文主要创新点 | 第28-29页 |
第二章 FE-ZSM-5 合成表征与芬顿反应活性研究 | 第29-38页 |
2.1 引言 | 第29-30页 |
2.2 实验部分 | 第30-33页 |
2.2.1 实验试剂与仪器设备 | 第30页 |
2.2.2 水热法制备 Fe-ZSM-5 | 第30-31页 |
2.2.3 产物的表征 | 第31-33页 |
2.3 实验结果与讨论 | 第33-37页 |
2.3.1 FE-ZSM-5 的表征 | 第33-35页 |
2.3.2 基于 FE-ZSM-5 的芬顿反应体系中自由基产生 | 第35-37页 |
2.4 本章小结 | 第37-38页 |
第三章 超声辅助反应条件影响蛋白质分子结构 | 第38-46页 |
3.1 引言 | 第38页 |
3.2 实验试剂与仪器设备 | 第38-39页 |
3.2.1 实验试剂 | 第38-39页 |
3.2.2 仪器设备 | 第39页 |
3.3 超声对蛋白质结构及降解效率的影响 | 第39-45页 |
3.3.1 直接超声与间接超声对蛋白质结构影响的对比 | 第39-41页 |
3.3.2 直接超声条件作用于蛋白质分子的影响 | 第41-43页 |
3.3.3 超声辅助促进芬顿反应降解蛋白质分子 | 第43-45页 |
3.4 本章小结 | 第45-46页 |
第四章 FE-ZSM-5 超声-芬顿反应预处理血液中主要蛋白质分子条件参数优化 | 第46-56页 |
4.1 引言 | 第46页 |
4.2 实验试剂与仪器设备 | 第46-47页 |
4.2.1 实验试剂 | 第46-47页 |
4.2.2 仪器设备 | 第47页 |
4.3 实验方法及结果讨论 | 第47-54页 |
4.3.1 样品配制 | 第47页 |
4.3.2 样品处理 | 第47-48页 |
4.3.3 反应体系条件参数的优化及结果讨论 | 第48-51页 |
4.3.4 优化反应条件下,不同蛋白质(BSA,HB,FIB)在反应过程中的紫外吸收变化 | 第51-54页 |
4.4 本章小结 | 第54-56页 |
第五章 实际复杂生物样品预处理及 HG-AFS 测定其总砷浓度 | 第56-65页 |
5.1 引言 | 第56页 |
5.2 实验试剂与仪器设备 | 第56-57页 |
5.2.1 实验试剂 | 第56页 |
5.2.2 仪器设备 | 第56-57页 |
5.3 实验方法及结果讨论 | 第57-63页 |
5.3.1 FE-ZSM-5 超声-芬顿反应体系预处理血液样品 | 第57-58页 |
5.3.2 健康血液对照组样品加入砷剂后的预处理 | 第58-61页 |
5.3.3 氢化物发生-原子荧光光谱法测定砷剂给药组血液样品中砷含量 | 第61-63页 |
5.4 本章小结 | 第63-65页 |
第六章 总结与展望 | 第65-67页 |
6.1 本论文工作总结 | 第65-66页 |
6.2 论文展望 | 第66-67页 |
参考文献 | 第67-78页 |
附录1 | 第78-79页 |
附录2 | 第79-80页 |
附录3 | 第80-83页 |
致谢 | 第83-84页 |
攻读硕士学位期间发表论文和专利申请情况 | 第84页 |