| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 前言 | 第10-12页 |
| 1 材料与方法 | 第12-28页 |
| 1.1 材料 | 第12-13页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第12页 |
| 1.1.2 实验器械 | 第12页 |
| 1.1.3 主要试剂 | 第12-13页 |
| 1.1.4 主要仪器 | 第13页 |
| 1.2 方法 | 第13-28页 |
| 1.2.1 原代细胞分离培养及鉴定 | 第13-15页 |
| 1.2.2 Real-TimePCR | 第15-19页 |
| 1.2.3 Westernblot | 第19-23页 |
| 1.2.4 免疫组化 | 第23-24页 |
| 1.2.5 兔主动脉瓣膜钙化模型的建立 | 第24-25页 |
| 1.2.6 动物超声 | 第25-26页 |
| 1.2.7 血清胆固醇、血钙水平的测定 | 第26-27页 |
| 1.2.8 统计学分析 | 第27-28页 |
| 2 结果 | 第28-43页 |
| 2.1 NADPH氧化酶在猪主动脉瓣膜的生理性表达 | 第28-30页 |
| 2.2 Nox2抑制剂雷公藤红素对体外培养VIC钙化的保护作用 | 第30-33页 |
| 2.3 Nox2抑制剂雷公藤红素对兔CAVD的保护作用 | 第33-43页 |
| 3 讨论 | 第43-50页 |
| 3.1 主动脉瓣膜的正常结构和钙化 | 第43页 |
| 3.2 主动脉瓣膜细胞的相互作用 | 第43-44页 |
| 3.3 间质细胞的分离和培养 | 第44-45页 |
| 3.4 Nox2在主动脉瓣膜钙化中的变化 | 第45-47页 |
| 3.5 Nox2抑制剂雷公藤红素对瓣膜钙化的保护作用 | 第47-49页 |
| 3.6 小结 | 第49-50页 |
| 4 综述 | 第50-60页 |
| 参考文献 | 第60-69页 |
| 英文缩略表 | 第69-71页 |
| 附录 | 第71-72页 |
| 攻读学位期间发表文章情况 | 第72-73页 |
| 致谢 | 第73-74页 |
| 个人简历 | 第74页 |
