| 英文缩略词(Abbreviation) | 第7-8页 |
| 摘要 | 第8-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 1.前言 | 第14-16页 |
| 2.实验材料 | 第16-18页 |
| 2.1 实验动物 | 第16页 |
| 2.2 药品与试剂 | 第16-17页 |
| 2.3 仪器与设备 | 第17-18页 |
| 3.实验方法 | 第18-25页 |
| 3.1 原代细胞实验 | 第18-23页 |
| 3.1.1 大鼠脑血管内皮细胞的分离培养 | 第18页 |
| 3.1.2 大鼠脑血管内皮细胞的鉴定 | 第18-19页 |
| 3.1.3 缺氧损伤模型的建立及实验分组 | 第19页 |
| 3.1.4 CCK-8法实验 | 第19-20页 |
| 3.1.5 硝酸还原酶法测定NO含量 | 第20页 |
| 3.1.6 亚甲基蓝分光光度法测定H_2S含量 | 第20页 |
| 3.1.7 G-LISA检测RhoA活性 | 第20-21页 |
| 3.1.8 大鼠脑血管内皮细胞蛋白提取 | 第21页 |
| 3.1.9 Westernblot实验 | 第21-23页 |
| 3.2 小鼠在体实验 | 第23-24页 |
| 3.2.1 双侧颈总动脉结扎制备小鼠脑缺血模型 | 第23页 |
| 3.2.2 实验分组与给药 | 第23页 |
| 3.2.3 激光散斑成像（LSI）系统测定脑血流量 | 第23-24页 |
| 3.2.4 小鼠脑组织LDH测定 | 第24页 |
| 3.2.5 小鼠脑组织MDA的测定 | 第24页 |
| 3.3 统计学处理 | 第24-25页 |
| 4.实验结果 | 第25-39页 |
| 4.1 大鼠脑血管内皮细胞不同缺氧时间CSE/H_2S、NO/eNOS、RhoA/ROCK通路的动态变化 | 第25-30页 |
| 4.1.1 大鼠脑血管内皮细胞原代培养与鉴定 | 第25-26页 |
| 4.1.2 缺氧损伤对大鼠脑血管内皮细胞活力的影响 | 第26-27页 |
| 4.1.3 缺氧损伤对大鼠脑血管内皮细胞H_2S、NO含量及RhoA活性的影响 | 第27-28页 |
| 4.1.4 缺氧损伤对大鼠脑血管内皮细胞CSE、eNOS、ROCK1、ROCK2蛋白表达水平的影响 | 第28-30页 |
| 4.2 H_2S对大鼠脑血管内皮细胞RhoA活性的影响 | 第30-31页 |
| 4.3 RhoA-ROCK通路对大鼠脑血管内皮细胞H_2S的影响 | 第31-33页 |
| 4.4 H_2S在TFR抗脑缺血损伤中的作用 | 第33-39页 |
| 4.4.1 TFR抑制小鼠脑缺血损伤脑血流量下降的影响 | 第33-34页 |
| 4.4.2 TFR抑制小鼠脑缺血脑组织LDH活性下降的影响 | 第34页 |
| 4.4.3 TFR抑制小鼠脑缺血脑组织MDA含量升高的影响 | 第34-35页 |
| 4.4.4 CSE酶抑制剂PPG对TFR抑制脑缺血损伤小鼠脑血流量下降的影响 | 第35-36页 |
| 4.4.5 CSE抑制剂PPG预处理对TFR抑制小鼠脑缺血脑组织LDH活性下降的影响 | 第36-37页 |
| 4.4.6 CSE抑制剂PPG预处理对TFR抑制小鼠脑缺血脑组织MDA含量升高的影响 | 第37-39页 |
| 5.讨论 | 第39-42页 |
| 5.1 大鼠脑血管内皮细胞缺氧后H_2S/CSE通路RhoA-ROCK通路动态变化 | 第39-40页 |
| 5.2 大鼠脑血管内皮细胞中H_2S与RhoA-ROCK通路的相互抑制作用 | 第40-41页 |
| 5.3 TFR具有抗小鼠脑缺血损伤作用且其可能机制与H_2S有关 | 第41-42页 |
| 6.结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-47页 |
| 附录 | 第47-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 综述 | 第49-56页 |
| 参考文献 | 第53-56页 |
