| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-11页 |
| 缩略词表 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 第一章 PEG 化冻干免疫脂质体（LPIL）的制剂学研究 | 第14-29页 |
| 一、仪器与材料 | 第14-15页 |
| （一） 主要仪器设备 | 第14页 |
| （二） 主要材料和试剂 | 第14-15页 |
| 二、方法与结果 | 第15-26页 |
| （一） PEG 化脂质体（PL）的制备 | 第15-16页 |
| （二） PEG 化免疫脂质体（PIL）的制备 | 第16-23页 |
| （三） PEG 化冻干免疫脂质体（LPIL）的制备 | 第23-26页 |
| 三、讨论 | 第26-28页 |
| （一） 阳离子脂质体制备方法选择 | 第26-27页 |
| （二） 抗体连接方法的选择 | 第27页 |
| （三） PIL 表面连接的Fab’数目 | 第27页 |
| （四） 脂质浓度测定 | 第27-28页 |
| 四、小结 | 第28-29页 |
| 第二章 LPIL/siRNA 复合物的制剂学研究 | 第29-38页 |
| 一、仪器与材料 | 第29-30页 |
| （一） 主要仪器设备 | 第29页 |
| （二） 主要材料和试剂 | 第29-30页 |
| 二、方法 | 第30-33页 |
| （一） LPIL/siRNA 复合物的制备 | 第30页 |
| （二） LPIL/siRNA 复合物的粒径和Zeta 电位测定 | 第30-31页 |
| （三） Quant-iT~(TM) RiboGreen~(?) 法测定siRNA 的包封率 | 第31-32页 |
| （四） 琼脂糖凝胶电泳考察siRNA 血清降解作用 | 第32-33页 |
| 三、结果与讨论 | 第33-37页 |
| （一） LPIL/siRNA 复合物的粒径和zeta 电位测定 | 第33-35页 |
| （二） Quant-iT~(TM) RiboGreen~(?) 法测定 siRNA 的包封率 | 第35页 |
| （三） 琼脂糖凝胶电泳考察siRNA 血清稳定性 | 第35-36页 |
| （四） 冻干再水化法提高脂质体对siRNA 保护作用 | 第36-37页 |
| 四、小结 | 第37-38页 |
| 第三章 LPIL/siRNA 复合物的体外活性研究 | 第38-53页 |
| 一、仪器与材料 | 第38-39页 |
| （一） 主要仪器设备 | 第38页 |
| （二） 细胞株 | 第38页 |
| （三） siRNA | 第38页 |
| （四） 主要材料与试剂 | 第38-39页 |
| 二、方法 | 第39-43页 |
| （一） 高表达HER2 抗原乳腺癌细胞株的筛选 | 第39页 |
| （二） siRNA 转染效率考察 | 第39-40页 |
| （三） siRNA 基因沉默效率考察 | 第40-41页 |
| （四） 共聚焦观察细胞对LPIL/siRNA 复合物的内吞 | 第41-42页 |
| （五） 细胞生存率研究 | 第42-43页 |
| （六） 肿瘤细胞迁移抑制实验 | 第43页 |
| 三、结果与讨论 | 第43-52页 |
| （一） 高表达HER2 抗原乳腺癌细胞株的筛选 | 第43-44页 |
| （二） siRNA 转染效率考察 | 第44-46页 |
| （三） siRNA 基因沉默效率考察 | 第46-49页 |
| （四） 共聚焦观察细胞对LPIL/siRNA 复合物的内吞 | 第49-50页 |
| （五） 细胞生存率研究 | 第50页 |
| （六） 肿瘤细胞迁移抑制实验 | 第50-52页 |
| 四、小结 | 第52-53页 |
| 全文小结 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-58页 |
| 综述：脂质载体系统在siRNA 转导方面的研究 | 第58-73页 |
| 在读期间参加科研工作情况 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74页 |
