| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 缩略词 | 第9-11页 |
| 1. 文献综述 | 第11-23页 |
| 1.1 禽传染性支气管炎 | 第11-17页 |
| 1.1.1 概述 | 第11页 |
| 1.1.2 IBV分子生物学简介 | 第11-14页 |
| 1.1.3 流行病学、临床症状及病理变化 | 第14-16页 |
| 1.1.4 禽传染性支气管炎诊断技术 | 第16-17页 |
| 1.2 免疫胶体金层析技术 | 第17-23页 |
| 1.2.1 胶体金的结构与理化性质 | 第17-18页 |
| 1.2.2 胶体金的制备 | 第18-20页 |
| 1.2.3 免疫胶体金 | 第20-21页 |
| 1.2.4 胶体金免疫层析试纸条 | 第21-23页 |
| 2. 研究目的与意义 | 第23页 |
| 3. 材料与方法 | 第23-33页 |
| 3.1 材料 | 第23-25页 |
| 3.1.1 抗原 | 第23页 |
| 3.1.2 细胞、血清、鸡胚及实验动物 | 第23-24页 |
| 3.1.3 主要试剂与材料 | 第24页 |
| 3.1.4 试剂的配制 | 第24-25页 |
| 3.1.5 主要仪器 | 第25页 |
| 3.2 方法 | 第25-33页 |
| 3.2.1 抗IBV单克隆抗体的制备与纯化 | 第25-26页 |
| 3.2.2 羊抗鼠IgG抗体的提取及纯化 | 第26-27页 |
| 3.2.3 抗体纯度鉴定 | 第27页 |
| 3.2.4 胶体金的制备与鉴定 | 第27-28页 |
| 3.2.5 胶体金标记抗IBV单克隆抗体的制备与纯化 | 第28-29页 |
| 3.2.6 试纸条检测体系的组成 | 第29-32页 |
| 3.2.7 试纸条的特性检验 | 第32页 |
| 3.2.8 动物试验 | 第32-33页 |
| 4 结果与分析 | 第33-43页 |
| 4.1 抗IBV单克隆抗体的制备与纯化 | 第33-34页 |
| 4.2 羊抗鼠IgG抗体的提取及纯化 | 第34-35页 |
| 4.3 胶体金的鉴定 | 第35-36页 |
| 4.4 抗IBV单克隆抗体的胶体金标记条件 | 第36-37页 |
| 4.4.1 胶体金标记抗IBV单克隆抗体的最佳标记pH值 | 第36页 |
| 4.4.2 胶体金标记抗IBV单克隆抗体的最适标记量 | 第36-37页 |
| 4.5 试纸条工作条件的筛选 | 第37-39页 |
| 4.5.1 包被体系的确定 | 第37页 |
| 4.5.2 封闭液的确定 | 第37-38页 |
| 4.5.3 抗IBV单抗V5包被量的确定 | 第38页 |
| 4.5.4 羊抗鼠IgG抗体包被量的确定 | 第38-39页 |
| 4.5.5 金标垫包被金标单抗量的选择 | 第39页 |
| 4.6 试纸条的性能测定 | 第39-42页 |
| 4.6.1 特异性试验 | 第39-40页 |
| 4.6.2 灵敏度试验 | 第40-41页 |
| 4.6.3 重复性试验 | 第41页 |
| 4.6.4 稳定性试验 | 第41-42页 |
| 4.7 动物试验 | 第42-43页 |
| 4.7.1 病毒的增殖 | 第42页 |
| 4.7.2 动物攻毒试验 | 第42-43页 |
| 4.7.3 试纸条检测结果及ELISA结果对比 | 第43页 |
| 5 讨论 | 第43-46页 |
| 5.1 关于检测样本 | 第43页 |
| 5.2 抗体的纯化 | 第43-44页 |
| 5.3 胶体金的制备 | 第44页 |
| 5.4 胶体金标记 | 第44-45页 |
| 5.5 封闭液的选择 | 第45页 |
| 5.6 动物IBV人工感染样品检测 | 第45-46页 |
| 6 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-53页 |
| 致谢 | 第53页 |
