| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 中英文缩略词表 | 第9-10页 |
| 第1章 前言 | 第10-13页 |
| 第2章 材料与方法 | 第13-27页 |
| 2.1 实验材料 | 第13-18页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第13页 |
| 2.1.2 主要实验试剂 | 第13-14页 |
| 2.1.3 主要实验仪器 | 第14-15页 |
| 2.1.4 动物实验试剂 | 第15页 |
| 2.1.5 膜蛋白提取试剂 | 第15页 |
| 2.1.6 蛋白印迹试剂 | 第15-18页 |
| 2.1.7 RT-PCR 试剂 | 第18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-27页 |
| 2.2.1 实验动物分组 | 第18-19页 |
| 2.2.2 肾性高血压诱导的 SD 大鼠实验性颅内动脉瘤模型建立 | 第19-20页 |
| 2.2.3 蛋白印迹 | 第20-23页 |
| 2.2.4 Real-time PCR | 第23-26页 |
| 2.2.5 统计学方法 | 第26-27页 |
| 第3章 结果 | 第27-33页 |
| 3.1 蛋白印迹（western blotting）检测 SD 大鼠颅内动脉瘤实验组中 src 激酶和 phospho-VE -cadherin 的表达 | 第27-30页 |
| 3.1.1 SD 大鼠颅内动脉瘤中 src 激酶的表达 | 第27-28页 |
| 3.1.2 SD 大鼠颅内动脉瘤中 phosph-VE-cadherin（Tyr-685）的表达 | 第28页 |
| 3.1.3 SD 大鼠颅内动脉瘤中 phosph-VE-cadherin（Tyr-658）的表达 | 第28-29页 |
| 3.1.4 SD 大鼠颅内动脉瘤中 phosph-VE-cadherin（Tyr-731）的表达 | 第29-30页 |
| 3.2 RT-qPCR 检测 SD 大鼠颅内动脉瘤中 src 激酶的表达 | 第30-33页 |
| 3.2.1 RNA 电泳结果 | 第30-31页 |
| 3.2.2 RNA 纯度测量结果 | 第31页 |
| 3.2.3 SD 大鼠颅内动脉瘤中 src 激酶 mRNA 的表达 | 第31-33页 |
| 第4章 讨论 | 第33-35页 |
| 第5章 结论 | 第35-36页 |
| 致谢 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-39页 |
| 附图 | 第39-41页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第41-42页 |
| 综述 | 第42-52页 |
| 参考文献 | 第50-52页 |
