| 英文缩略词 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10-12页 |
| 1. 前言 | 第13-14页 |
| 2. 实验材料与方法 | 第14-16页 |
| 2.1 实验动物 | 第14页 |
| 2.2 实验细胞 | 第14页 |
| 2.3 主要试剂 | 第14-15页 |
| 2.4 仪器与设备 | 第15-16页 |
| 3. 实验方法 | 第16-27页 |
| 3.1 制备LPS诱导的小鼠急性肝损伤模型 | 第16-17页 |
| 3.2 肝组织病理学检查 | 第17页 |
| 3.3 血清学指标 | 第17页 |
| 3.4 原代枯否细胞的分离 | 第17-18页 |
| 3.5 培养小鼠巨噬细胞株RAW264.7 | 第18页 |
| 3.6 M1/M2巨噬细胞模型的建立与鉴定 | 第18页 |
| 3.7 qRT-PCR法检测mRNA的表达 | 第18-21页 |
| 3.8 Western blot法检测蛋白的表达 | 第21-25页 |
| 3.9 细胞转染 | 第25-26页 |
| 3.10 流式细胞术检测巨噬细胞标志物 | 第26页 |
| 3.11 统计学分析 | 第26-27页 |
| 4 实验结果 | 第27-38页 |
| 4.1 急性肝损伤模型的建立 | 第27-28页 |
| 4.2 急性肝损伤模型组织Kv1.3的表达变化 | 第28-29页 |
| 4.3 原代枯否细胞Kv1.3表达变化 | 第29页 |
| 4.4 MgTx对巨噬细胞释放炎性细胞因子的影响 | 第29-30页 |
| 4.5 RAW264.7细胞M1和M2表型变化模型的建立与鉴定 | 第30-31页 |
| 4.6 Kv1.3对RAW264.7细胞M1和M2的调控作用 | 第31-36页 |
| 4.7 Kv1.3通过AKT信号调控M2表型变化 | 第36-38页 |
| 5. 讨论 | 第38-41页 |
| 结论 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-46页 |
| 附录 | 第46-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
| 综述 | 第48-58页 |
| 参考文献 | 第54-58页 |