摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
第一章 组织工程化神经修复外周神经缺损的研究进展 | 第11-22页 |
1.1 外周神经的结构与功能 | 第11页 |
1.2 外周神经的缺损修复机理 | 第11页 |
1.3 外周神经缺损的临床治疗方法 | 第11-12页 |
1.4 构建组织工程化神经的要素 | 第12-19页 |
1.4.1 种子细胞的选择 | 第12-14页 |
1.4.1.1 施旺细胞 | 第12-13页 |
1.4.1.2 胚胎干细胞 | 第13页 |
1.4.1.3 神经干细胞 | 第13页 |
1.4.1.4 骨髓间充质干细胞 | 第13-14页 |
1.4.1.5 脂肪干细胞 | 第14页 |
1.4.2 支架材料的选择 | 第14-18页 |
1.4.2.1 天然生物支架材料 | 第15-16页 |
1.4.2.2 天然高分子材料 | 第16-17页 |
1.4.2.3 不可生物降解的合成材料 | 第17页 |
1.4.2.4 可生物降解的合成材料 | 第17-18页 |
1.4.3 生物活性因子的选择 | 第18-19页 |
1.4.3.1 神经生长因子 | 第18页 |
1.4.3.2 脑源性神经营养因子 | 第18页 |
1.4.3.3 神经营养素-3 | 第18页 |
1.4.3.4 睾酮 | 第18-19页 |
1.4.3.5 胰岛素 | 第19页 |
1.5 组织工程化神经的构建 | 第19页 |
1.5.1 种子细胞植入支架的过程 | 第19页 |
1.5.2 组织工程化神经的体外培养 | 第19页 |
1.6 组织工程化神经在修复外周神经缺损中的应用 | 第19-21页 |
1.7 存在的问题及展望 | 第21-22页 |
第二章 组织工程化神经的构建 | 第22-27页 |
2.1 材料与方法 | 第22-24页 |
2.1.1 试验材料 | 第22-23页 |
2.1.1.1 试剂与药品 | 第22页 |
2.1.1.2 主要试剂的配制方法 | 第22页 |
2.1.1.3 主要仪器设备与耗材 | 第22-23页 |
2.1.2 试验方法 | 第23-24页 |
2.1.2.1 同种异体神经脱细胞支架的制备 | 第23-24页 |
2.1.2.2 组织工程化神经的构建 | 第24页 |
2.2 结果 | 第24-26页 |
2.2.1 脱细胞支架的鉴定结果 | 第24页 |
2.2.2 BMSCs的分离与鉴定 | 第24-25页 |
2.2.3 组织工程化神经的鉴定结果 | 第25-26页 |
2.3 讨论 | 第26-27页 |
第三章 丙酸睾酮对BMSCs复合同种异体神经脱细胞支架修复犬坐骨神经3cm缺损作用的研究 | 第27-39页 |
3.1 材料与方法 | 第27-30页 |
3.1.1 试验材料 | 第27-28页 |
3.1.1.1 试验动物 | 第27页 |
3.1.1.2 试剂与药品 | 第27页 |
3.1.1.3 主要试剂的配制方法 | 第27-28页 |
3.1.1.4 主要仪器设备与耗材 | 第28页 |
3.1.2 试验方法 | 第28-30页 |
3.1.2.1 犬坐骨神经缺损模型的制备和组织工程化神经的桥接修复 | 第28-29页 |
3.1.2.2 术后一般观察 | 第29页 |
3.1.2.3 神经电生理学评估 | 第29-30页 |
3.1.2.4 FG逆行追踪 | 第30页 |
3.1.2.5 组织学观察 | 第30页 |
3.1.2.6 统计学处理 | 第30页 |
3.2 结果 | 第30-36页 |
3.2.1 移植修复后模型犬的眼观恢复效果 | 第30-31页 |
3.2.2 神经电生理学检测 | 第31-32页 |
3.2.3 FG逆行追踪 | 第32-33页 |
3.2.4 解剖观察结果 | 第33页 |
3.2.5 腓肠肌组织形态学观察 | 第33-34页 |
3.2.6 移植物组织学观察 | 第34-36页 |
3.3 讨论 | 第36-39页 |
3.3.1 丙酸睾酮和BMSCs-ANAs工程化神经在修复犬坐骨神经缺损中的作用 | 第36-37页 |
3.3.2 工程化神经移植过程中的注意事项 | 第37页 |
3.3.3 试验动物的护理 | 第37-38页 |
3.3.4 神经电生理检测时的注意事项 | 第38页 |
3.3.5 FG逆行追踪检测时的注意事项 | 第38页 |
3.3.6 组间比较方法的改进 | 第38-39页 |
结论 | 第39-40页 |
参考文献 | 第40-48页 |
致谢 | 第48-49页 |
作者简介 | 第49页 |