杜仲中化学成分的提取、分离、纯化与测定
| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 绪论 | 第10-23页 |
| 1.1 概述 | 第10-11页 |
| 1.2 杜仲的化学成分分析 | 第11-15页 |
| 1.2.1 木脂素类 | 第13页 |
| 1.2.2 环烯醚萜类 | 第13页 |
| 1.2.3 苯丙素类化合物 | 第13页 |
| 1.2.4 黄酮类化合物 | 第13-14页 |
| 1.2.5 杜仲胶 | 第14页 |
| 1.2.6 多糖 | 第14页 |
| 1.2.7 抗真菌蛋白 | 第14-15页 |
| 1.2.8 氨基酸、维生素和微量元素 | 第15页 |
| 1.3 杜仲中活性成分提取分离研究进展 | 第15-19页 |
| 1.3.1 有机溶剂提取 | 第16页 |
| 1.3.2 系统溶剂提取法 | 第16页 |
| 1.3.3 溶剂固相萃取法 | 第16-17页 |
| 1.3.4 超声提取法 | 第17页 |
| 1.3.5 微波提取法 | 第17-18页 |
| 1.3.6 酶解法 | 第18页 |
| 1.3.7 大孔树脂分离法 | 第18-19页 |
| 1.3.8 硅胶柱色谱分离法 | 第19页 |
| 1.3.9 高速逆流色谱技术 | 第19页 |
| 1.4 杜仲活性成分分析检测研究进展 | 第19-21页 |
| 1.4.1 分光光度法 | 第20页 |
| 1.4.2 薄层色谱法 | 第20-21页 |
| 1.4.3 高效液相色谱法 | 第21页 |
| 1.4.4 气相色谱 | 第21页 |
| 1.5 本论文的内容与意义 | 第21-23页 |
| 2 杜仲中丁香脂素二葡萄糖苷的分离纯化及结构表征 | 第23-34页 |
| 2.1 引言 | 第23页 |
| 2.2 实验部分 | 第23-27页 |
| 2.2.1 仪器与试剂 | 第23-24页 |
| 2.2.2 杜仲的初步分离 | 第24-25页 |
| 2.2.3 氯仿萃取液的处理 | 第25-27页 |
| 2.3 实验结果与讨论 | 第27-33页 |
| 2.3.1 展开剂的选择结果分析 | 第27-28页 |
| 2.3.2 硅胶柱色谱分离条件的分析 | 第28-29页 |
| 2.3.3 薄层色谱监测结果分析 | 第29-30页 |
| 2.3.4 高效液相色谱检测分析 | 第30-32页 |
| 2.3.5 一号③样的定性及结构鉴定 | 第32-33页 |
| 2.4 总结 | 第33-34页 |
| 3 多波长HPLC法同时测定杜仲中三类有效成分 | 第34-43页 |
| 3.1 引言 | 第34页 |
| 3.2 实验部分 | 第34-36页 |
| 3.2.1 仪器与试剂 | 第34-35页 |
| 3.2.2 色谱条件 | 第35页 |
| 3.2.3 对照品溶液的制备 | 第35-36页 |
| 3.2.4 供试品溶液的制备 | 第36页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第36-40页 |
| 3.3.1 色谱条件的确定 | 第36-38页 |
| 3.3.2 提取条件优化 | 第38-39页 |
| 3.3.3 检验方法的验证 | 第39-40页 |
| 3.4 杜仲样品测定 | 第40-41页 |
| 3.5 本章小结 | 第41-43页 |
| 4 不同产地杜仲中的黄酮类化合物含量的差异研究 | 第43-51页 |
| 4.1 引言 | 第43页 |
| 4.2 实验部分 | 第43-46页 |
| 4.2.1 仪器与试剂 | 第43-44页 |
| 4.2.2 杜仲中黄酮的提取 | 第44-45页 |
| 4.2.3 总黄酮的测定 | 第45页 |
| 4.2.4 HPLC法测定各黄酮化合物 | 第45-46页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第46-50页 |
| 4.3.1 杜仲提取条件的优化 | 第46-48页 |
| 4.3.2 色谱条件的优化 | 第48-49页 |
| 4.3.3 不同产地杜仲黄酮类化合物的测定 | 第49页 |
| 4.3.4 不同产地杜仲的PCA分析比较 | 第49-50页 |
| 4.4 小结 | 第50-51页 |
| 5 总结 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-61页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文情况 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62页 |
