| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 第一章 引言 | 第9-11页 |
| 第二章 材料与方法 | 第11-21页 |
| 1. 实验材料 | 第11-13页 |
| 2. 实验方法及过程 | 第13-20页 |
| 2.1 临床标本的收集 | 第13页 |
| 2.2 临床标本的PCR检测 | 第13-15页 |
| 2.3 miR1385p过表达质粒的构建 | 第15-16页 |
| 2.4 细胞培养基及PBS的配制 | 第16页 |
| 2.5 0.25%胰蛋白酶溶液的配制 | 第16页 |
| 2.6 MTT的配制 | 第16页 |
| 2.7 细胞准备 | 第16-17页 |
| 2.8 细胞转染 | 第17-18页 |
| 2.9 MTT法 | 第18页 |
| 2.10 细胞凋亡的检测 | 第18页 |
| 2.11 Western blot | 第18-20页 |
| 3 统计学分析 | 第20-21页 |
| 第三章 实验结果 | 第21-27页 |
| 1.RT-PCR检测发现miR1385p在大部分的三阴性乳腺癌组织中表达降低 | 第21页 |
| 2．mi R1385p表达的高低与临床病理因素的关系 | 第21-22页 |
| 3.质粒转染三阴性乳腺癌细胞株MDA-MB-231 中过表达miR1385p | 第22-23页 |
| 4. 质粒转染后可以抑制MDA-MB-231 肿瘤细胞的生长 | 第23-24页 |
| 5. miR1385p可以诱导三阴性乳腺癌细胞株MDA-MB-231 的凋亡 | 第24-25页 |
| 6. miR1385p可以降低PD-L1的蛋白表达 | 第25-27页 |
| 第四章 讨论 | 第27-30页 |
| 第五章 结论与展望 | 第30-31页 |
| 1. 结论 | 第30页 |
| 2. 展望 | 第30-31页 |
| 参考文献 | 第31-34页 |
| 综述 | 第34-41页 |
| 参考文献 | 第38-41页 |
| 致谢 | 第41-42页 |
