| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 前言 | 第14-22页 |
| 1 CAFS 形态结构与鉴定 | 第14-15页 |
| 2 肿瘤相关成纤维细胞的来源 | 第15-18页 |
| 2.1 间质干细胞转分化 | 第15-16页 |
| 2.2 上皮细胞通过上皮-间质转化 | 第16页 |
| 2.3 内皮细胞通过内皮-间质转化 | 第16-17页 |
| 2.4 正常成纤维细胞基因改变 | 第17-18页 |
| 3 肿瘤相关成纤维细胞与肿瘤间质微环境 | 第18-19页 |
| 3.1 CAFs 在原发肿瘤中的作用 | 第18页 |
| 3.2 CAFs 在肿瘤入侵和转移中的作用 | 第18-19页 |
| 4 肿瘤相关成纤维细胞的靶向治疗 | 第19-22页 |
| 第二章 小鼠肝癌实体瘤模型的建立及肿瘤相关成纤维细胞的分离培养鉴定 | 第22-28页 |
| 1 试剂与仪器 | 第22-23页 |
| 1.1 药品及试剂 | 第22页 |
| 1.2 仪器设备 | 第22-23页 |
| 1.3 细胞来源 | 第23页 |
| 1.4 组织标本来源 | 第23页 |
| 1.5 实验动物 | 第23页 |
| 1.6 实验耗材 | 第23页 |
| 2 实验方法 | 第23-25页 |
| 2.1 小鼠肝癌实体瘤模型的建立 | 第23-24页 |
| 2.2 小鼠肿瘤相关成纤维细胞的分离培养鉴定 | 第24-25页 |
| 3 实验结果 | 第25-28页 |
| 3.1 肿瘤组织病理学形态观察 | 第25-26页 |
| 3.2 原代培养 CAFs 形态学观察 | 第26页 |
| 3.3 细胞免疫组化染色 | 第26-28页 |
| 第三章 MTT 法检测重组灵芝免疫调节蛋白对小鼠肝癌相关成纤维细胞增值的影响 | 第28-33页 |
| 1 试剂与仪器 | 第28-29页 |
| 1.1 药品及试剂 | 第28页 |
| 1.2 仪器设备 | 第28-29页 |
| 2 实验方法 | 第29-30页 |
| 2.1 实验分组 | 第29页 |
| 2.2 细胞计数与培养 | 第29页 |
| 2.3 OD 值测定 | 第29页 |
| 2.4 结果计算 | 第29页 |
| 2.5 统计学分析 | 第29-30页 |
| 3 实验结果 | 第30-33页 |
| 3.1 细胞形态观察 | 第30页 |
| 3.2 rLZ-8 作用 24 h、48 h、72 h 细胞增殖活力测定 | 第30-31页 |
| 3.3 给药 24 h、48 h、72 h 后细胞相对增值率测定结果 | 第31-33页 |
| 第四章 重组灵芝免疫调节蛋白对小鼠肝癌相关成纤维细胞中相关基因与蛋白表达的影响 | 第33-43页 |
| 1 材料仪器 | 第33-36页 |
| 1.1 药品及试剂 | 第33-34页 |
| 1.2 主要试剂配制 | 第34-35页 |
| 1.3 仪器设备 | 第35-36页 |
| 2 实验方法 | 第36-40页 |
| 2.1 Western Blot 法检测体内给药后肿瘤相关成纤维细胞中α-SMA、Vimentin 蛋白的表达 | 第36-37页 |
| 2.2 Western Blot 法检测体外给药后肿瘤相关成纤维细胞中α-SMA、Vimentin 的蛋白表达 | 第37-38页 |
| 2.3 Realtime-PCR 检测体外给药后 CAFs 中α-SMA、Vimentin基因的表达 | 第38-39页 |
| 2.4 统计学分析 | 第39-40页 |
| 3 结果分析 | 第40-43页 |
| 3.1 Western Blot 检测 rLZ-8 体内作用 CAFs 后α-SMA 与Vimentin 蛋白表达 | 第40-41页 |
| 3.2 Western Blot 检测 rLZ-8 体外作用 CAFs 后α-SMA 与Vimentin 蛋白表达 | 第41-42页 |
| 3.3 Real-time PCR 检测体外实验中 CAFs 的基因表达的变化 | 第42-43页 |
| 第五章 讨论 | 第43-47页 |
| 1 复制小鼠肝癌模型，并从肿瘤组织中提取 CAFS | 第43-44页 |
| 2 RLZ-8 对 CAFS 细胞增殖活性的影响 | 第44-45页 |
| 3 RLZ-8 肿瘤组织和体外培养 CAFS 中Α-SMA 和 VIMENTIN 基因和蛋白表达的影响 | 第45-47页 |
| 第六章 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-54页 |
| 作者简介 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55页 |
