导师评阅表 | 第3-6页 |
摘要 | 第6-8页 |
英文摘要 | 第8-9页 |
中英文对照 | 第12-13页 |
引言 | 第13-15页 |
第一章 文献综述 | 第15-33页 |
1.1 布鲁氏菌病 | 第15-16页 |
1.1.1 布鲁氏菌的发现历程 | 第15-16页 |
1.1.2 布鲁氏菌的种类 | 第16页 |
1.1.3 布鲁氏菌的理化特性 | 第16页 |
1.2 单核苷酸多态性(SNP) | 第16-18页 |
1.2.1 SNP的概述 | 第16-17页 |
1.2.2 SNP的研究概况 | 第17-18页 |
1.3 单倍型(Haplotype) | 第18-21页 |
1.3.1 单倍型概述 | 第18-19页 |
1.3.2 单倍型研究现状 | 第19页 |
1.3.3 单倍型的关联分析 | 第19-20页 |
1.3.4 单倍型分析在疾病关联研究中的应用 | 第20-21页 |
1.4 主要组织兼容性复合体(MHC)的概述 | 第21-23页 |
1.4.1 MHC分子结构 | 第22-23页 |
1.4.2 MHC分子的生物学功能 | 第23页 |
1.4.3 MHC遗传特点 | 第23页 |
1.5 绵羊MHC(OLA)的研究现状 | 第23-28页 |
1.5.1 绵羊MHC结构 | 第23-24页 |
1.5.2 绵羊MHC物理图谱 | 第24-26页 |
1.5.3 OLA-DRB1基因多态性的研究概况 | 第26-27页 |
1.5.4 OLA-DRB1基因与疾病相关的研究 | 第27-28页 |
1.6 检测单核苷酸多态性(SNP)的技术 | 第28-30页 |
1.6.1 PCR-SSCP技术的原理 | 第28-30页 |
1.6.2 PCR-SSCP技术在动物遗传变异研究中的应用 | 第30页 |
1.7 本研究目的及意义 | 第30-32页 |
1.8 技术路线 | 第32-33页 |
第二章 中国美利奴羊MHC-DRB1exon2SNPs检测及其与布鲁氏菌病易感性相关性 | 第33-54页 |
2.1 材料和方法 | 第33-42页 |
2.1.1 实验材料 | 第33-34页 |
2.1.2 常规溶液及培养基配制 | 第34-35页 |
2.1.3 主要分子生物学软件 | 第35页 |
2.1.4 实验方法 | 第35-42页 |
2.2 结果与讨论 | 第42-52页 |
2.2.1 布鲁氏菌血清检测结果 | 第42-43页 |
2.2.2 基因组DNA的提取及电泳检测结果 | 第43页 |
2.2.3 中国美利奴羊MHC-DRB1exon2的PCR扩增产物结果检测 | 第43-44页 |
2.2.4 SSCP电泳结果分析 | 第44-45页 |
2.2.5 中国美利奴羊MHC–DRB1基因exon2SNPs分析 | 第45-46页 |
2.2.6 中国美利奴羊MHC-DRB1基因exon2的单氨基酸多态性(SAP)分析 | 第46-47页 |
2.2.7 中国美利奴羊与HLA-DRB1基因exon2多态性的比较分析 | 第47-48页 |
2.2.8 中国美利奴羊与其他绵羊品种MHC-DRB1基因多态性的比较分析 | 第48-49页 |
2.2.9 中国美利奴羊MHC–DRB1基因exon2多态性与布鲁氏菌病易感性的关系 | 第49-52页 |
2.3 结论 | 第52-54页 |
第三章 中国美利奴羊MHC-DRB1exon2单倍型构建及与布鲁氏菌病易感性关联分析 | 第54-62页 |
3.1 材料和方法 | 第54-55页 |
3.1.1 实验材料 | 第54页 |
3.1.2 常规溶液及培养基配制 | 第54页 |
3.1.3 主要分子生物学软件 | 第54页 |
3.1.4 实验方法 | 第54-55页 |
3.2 结果与讨论 | 第55-61页 |
3.2.1 中国美利奴羊MHC-DRB1exon2的PCR扩增结果检测 | 第55-56页 |
3.2.2 中国美利奴羊MHC-DRB1exon2的SNPs检测 | 第56-57页 |
3.2.3 Hardy-Weinberg平衡的吻合度检验 | 第57-58页 |
3.2.4 中国美利奴羊MHC-DRB1exon2的连锁不平衡分析 | 第58-60页 |
3.2.5 中国美利奴羊MHC-DRB1exon2单倍型与布鲁氏菌病易感性相关性 | 第60-61页 |
3.3 结论 | 第61-62页 |
第四章 总结与展望 | 第62-63页 |
参考文献 | 第63-68页 |
致谢 | 第68-69页 |
作者简介及在学成果 | 第69页 |