中文摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5页 |
缩略语/符号说明 | 第9-10页 |
前言 | 第10-12页 |
研究现状、成果 | 第10-11页 |
研究目的、方法 | 第11-12页 |
1 对象和方法 | 第12-27页 |
1.1 研究材料 | 第12-14页 |
1.1.1 细胞培养试剂 | 第12页 |
1.1.2 HUMSCs体外分化诱导试剂 | 第12页 |
1.1.3 HUMSCs分化鉴定染色试剂 | 第12页 |
1.1.4 流式细胞术试剂 | 第12-13页 |
1.1.5 ELISA kits | 第13页 |
1.1.6 质粒提取试剂 | 第13页 |
1.1.7 细胞转染试剂 | 第13页 |
1.1.8 Western blotting试剂 | 第13-14页 |
1.1.9 Real-time PCR试剂 | 第14页 |
1.1.10 TUNEL试剂 | 第14页 |
1.1.11 其他 | 第14页 |
1.2 研究设备 | 第14页 |
1.3 研究方法 | 第14-27页 |
1.3.1 流式细胞术检测HUMSCs表面标志物的表达 | 第14-15页 |
1.3.2 HUMSCs体外分化诱导 | 第15页 |
1.3.3 染色鉴定诱导结果 | 第15-16页 |
1.3.4 ELISA检测A549细胞培养上清中MCP-1 的分泌水平 | 第16-17页 |
1.3.5 重组质粒的转化(热休克法) | 第17页 |
1.3.6 质粒大量提取 | 第17-18页 |
1.3.7 紫外分光光法定量DNA和RNA | 第18页 |
1.3.8 293T细胞包装慢病毒及感染HUMSCs | 第18-19页 |
1.3.9 Western blotting检测A549细胞MCP-1 的敲低效果 | 第19-20页 |
1.3.10 Real-time PCR检测A549细胞MCP-1 的敲低效果 | 第20-22页 |
1.3.11 Transwell趋化实验检测不同条件下HUMSCs的趋化能力 | 第22页 |
1.3.12 IVIS Xenogen活体成像系统检测HUMSCs的体内归巢能力 | 第22-23页 |
1.3.13 MSC.ISZ-sTRAIL对A549肺癌皮下移植瘤的治疗作用 | 第23-26页 |
1.3.14 统计学方法 | 第26-27页 |
2 实验结果 | 第27-35页 |
2.1 HUMSCs的成功分离与鉴定 | 第27-28页 |
2.1.1 HUMSCs的形态特点 | 第27页 |
2.1.2 HUMSCs的分化潜能 | 第27页 |
2.1.3 HUMSCs的表型特点 | 第27-28页 |
2.2 HUMSCs在体内外均可向肺癌归巢 | 第28-29页 |
2.2.1 HUMSCs在体外向肺癌定向迁移 | 第28页 |
2.2.2 HUMSCs在体内向肺癌归巢 | 第28-29页 |
2.3 MCP-1/CCR2轴促进HUMSCs向肺癌归巢 | 第29-31页 |
2.3.1 A549和HUMSCs分别高表达MCP-1 和CCR2 | 第29页 |
2.3.2 A549细胞MCP-1 的敲低效果检测 | 第29-30页 |
2.3.3 敲低A549细胞MCP-1 的表达显著抑制HUMSCs的趋化能力 | 第30页 |
2.3.4 抑制 HUMSCs 表面的 CCR2 显著减少其向肺癌 A549 细胞的迁移 | 第30-31页 |
2.4 表达载体的成功构建及目的基因的表达 | 第31-32页 |
2.4.1 表达载体的成功构建 | 第31页 |
2.4.2 目的基因在HUMSCs中高效表达 | 第31-32页 |
2.5 MSC.ISZ-sTRAIL对A549肺癌皮下移植瘤的治疗作用 | 第32-35页 |
2.5.1 MSC.ISZ-sTRAIL诱导肿瘤组织坏死和肿瘤细胞凋亡,并延长荷瘤小鼠的生存期 | 第32-33页 |
2.5.2 MSC.ISZ-sTRAIL的安全性评估 | 第33-35页 |
3 讨论 | 第35-41页 |
3.1 MSCs作为载体应用于抗肿瘤治疗 | 第35-36页 |
3.2 MSCs对肿瘤的作用尚无定论 | 第36-37页 |
3.3 MSCs的归巢机制尚不清楚 | 第37-39页 |
3.4 MSCs归巢的影响因素 | 第39页 |
3.5 TRAIL选择性诱导肿瘤细胞凋亡 | 第39-40页 |
3.6 结语 | 第40-41页 |
结论 | 第41-42页 |
参考文献 | 第42-49页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第49-50页 |
综述 间充质干细胞的研究进展 | 第50-66页 |
综述参考文献 | 第57-66页 |
致谢 | 第66-67页 |
个人简历 | 第67页 |