| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 前言 | 第10-17页 |
| 1.1 荔枝成花调控相关研究进展 | 第10-12页 |
| 1.1.1 温度的影响 | 第10-11页 |
| 1.1.2 枝梢成熟度的影响 | 第11-12页 |
| 1.2 植物开花调控途径的研究 | 第12-13页 |
| 1.3 miRNA调控植物开花的研究进展 | 第13-17页 |
| 1.3.1 miR156和miR 172对植物成花的影响 | 第13-15页 |
| 1.3.2 糖调控miRNA的表达 | 第15页 |
| 1.3.3 SPL对植物成花的影响 | 第15-17页 |
| 1.4 荔枝成花相关基因的研究 | 第17页 |
| 1.5 本研究的立题依据和研究意义 | 第17页 |
| 2. 材料与方法 | 第17-26页 |
| 2.1 材料 | 第17-18页 |
| 2.2 方法 | 第18-20页 |
| 2.3 成花生物学统计 | 第20页 |
| 2.4 测定分析方法 | 第20-21页 |
| 2.4.1 叶片长、宽以及叶绿素含量的测定 | 第20页 |
| 2.4.2 可溶性糖的提取与测定 | 第20-21页 |
| 2.5 LcSPLs基因的克隆 | 第21-23页 |
| 2.5.1 总RNA提取 | 第21页 |
| 2.5.2 cDNA第一链合成 | 第21-22页 |
| 2.5.3 LcSPLs基因的全长克隆 | 第22-23页 |
| 2.6 荔枝miRNA的序列验证及表达分析 | 第23-25页 |
| 2.6.1 植物组织小分子RNA抽提 | 第23-24页 |
| 2.6.2 小分子RNA完整性及浓度的测定 | 第24页 |
| 2.6.3 microRNA的逆转录反应 | 第24页 |
| 2.6.4 miRNA序列验证的PCR扩增及电泳检测 | 第24-25页 |
| 2.6.5 qRT-PCR检测miRNA的表达差异 | 第25页 |
| 2.7 成花关键基因LcFT1、LcFT2及LcSPLs的表达分析 | 第25-26页 |
| 2.7.1 qRT-PCR引物设计 | 第25-26页 |
| 2.7.2 qRT-PCR检测LcFT1、LcFT2及LcSPL同源基因的表达差异 | 第26页 |
| 3. 结果与分析 | 第26-43页 |
| 3.1 大田试验成花生物学统计结果 | 第26-28页 |
| 3.2 控温室试验结果 | 第28-30页 |
| 3.2.1 不同成熟度末次梢叶片特征描述 | 第28-29页 |
| 3.2.2 不同成熟度末次梢成花生物学统计结果 | 第29-30页 |
| 3.3 可溶性糖含量测定分析 | 第30-32页 |
| 3.4 miRNA的定量结果分析 | 第32-35页 |
| 3.4.1 小分子RNA提取结果 | 第32页 |
| 3.4.2 miRNA序列的验证结果 | 第32-33页 |
| 3.4.3 miRNA的实时荧光定量PCR分析 | 第33-35页 |
| 3.5 荔枝LcSPLs基因的分析 | 第35-41页 |
| 3.5.1 总RNA提取结果 | 第35-36页 |
| 3.5.2 LcSPL同源基因克隆测序结果比对 | 第36-37页 |
| 3.5.3 LcSPLs基因氨基酸序列进化分析 | 第37-39页 |
| 3.5.4 LcSPLs基因的表达分析 | 第39-41页 |
| 3.6 成花关键基因FT1、FT2的表达分析 | 第41-43页 |
| 4 讨论与结论 | 第43-48页 |
| 4.1 讨论 | 第43-46页 |
| 4.2 结论 | 第46-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-55页 |
