摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
英文缩略词 | 第11-12页 |
第1章 前言 | 第12-17页 |
1.1 布鲁氏菌概述 | 第12-13页 |
1.2 布鲁氏菌检测方法的研究现状 | 第13-16页 |
1.2.1 免疫磁分离技术 | 第13-14页 |
1.2.2 量子点荧光标记技术 | 第14-15页 |
1.2.3 鸡卵黄抗体技术 | 第15-16页 |
1.3 本课题主要研究目的 | 第16-17页 |
第2章 材料与方法 | 第17-30页 |
2.1 材料与仪器 | 第17-21页 |
2.1.1 试剂 | 第17-18页 |
2.1.2 试剂配制 | 第18-19页 |
2.1.3 仪器 | 第19-20页 |
2.1.4 菌株 | 第20页 |
2.1.5 实验动物 | 第20-21页 |
2.2 方法 | 第21-30页 |
2.2.1 布鲁氏菌多克隆抗体的制备与鉴定 | 第21-26页 |
2.2.2 生物探针的制备及优化 | 第26-27页 |
2.2.3 布鲁氏菌快速检测方法的建立 | 第27-28页 |
2.2.4 布鲁氏菌快速检测方法的评价 | 第28-29页 |
2.2.5 模拟样的检测 | 第29-30页 |
第3章 结果 | 第30-44页 |
3.1 布鲁氏菌多克隆抗体的制备与鉴定 | 第30-38页 |
3.1.0 间接酶联免疫吸附试验(iELISA)方法的建立 | 第30-34页 |
3.1.1 兔血清抗体效价的测定 | 第34-35页 |
3.1.2 多克隆抗体效价的测定 | 第35页 |
3.1.3 多克隆抗体效价特异性评价 | 第35-36页 |
3.1.4 多克隆抗体纯度鉴定 | 第36-37页 |
3.1.5 多克隆抗体蛋白含量的测定 | 第37-38页 |
3.2 生物探针的制备及优化 | 第38-39页 |
3.2.1 磁纳米探针的优化 | 第38页 |
3.2.2 量子点探针的优化 | 第38-39页 |
3.3 布鲁氏菌快速检测方法的建立 | 第39-41页 |
3.3.1 磁纳米探针用量的优化 | 第39页 |
3.3.2 富集时间的优化 | 第39-40页 |
3.3.3 量子点探针用量的优化 | 第40页 |
3.3.4 标记时间的优化 | 第40-41页 |
3.4 布鲁氏菌快速检测方法的评价 | 第41-43页 |
3.4.1 检测限的确定 | 第41-42页 |
3.4.2 准确度的确定 | 第42页 |
3.4.3 特异性的确定 | 第42页 |
3.4.4 重复性结果 | 第42-43页 |
3.5 模拟样的检测 | 第43-44页 |
3.5.1 模拟样的检测 | 第43-44页 |
第4章 讨论 | 第44-49页 |
4.1 布鲁氏菌多克隆抗体的制备与鉴定 | 第44-45页 |
4.2 生物探针的制备及优化 | 第45-46页 |
4.3 检测方法的建立与效果评价 | 第46-49页 |
结论 | 第49-50页 |
参考文献 | 第50-58页 |
作者简介及在攻读硕士期间所取得的科研成果 | 第58-61页 |
致谢 | 第61-62页 |