中文摘要 | 第4-5页 |
abstract | 第5-6页 |
第一章 绪论 | 第10-20页 |
1.1 杂种优势研究进展 | 第10-13页 |
1.1.1 经典遗传学理论 | 第10-11页 |
1.1.2 生理生化代谢与杂种优势 | 第11-12页 |
1.1.3 分子生物学研究与杂种优势 | 第12-13页 |
1.2 基因差异表达技术研究进展 | 第13-14页 |
1.3 玉米耐盐性研究进展 | 第14-16页 |
1.3.1 盐胁迫对玉米萌芽和幼苗生长的影响 | 第15页 |
1.3.2 盐胁迫对玉米光合作用的影响 | 第15页 |
1.3.3 盐胁迫对玉米渗透调节能力的影响 | 第15-16页 |
1.4 萜类化合物与非生物胁迫 | 第16-17页 |
1.5 水通道蛋白与非生物胁迫 | 第17-18页 |
1.6 研究目的意义与研究内容 | 第18-20页 |
1.6.1 本研究的目的与意义 | 第18页 |
1.6.2 研究内容 | 第18-20页 |
第二章 玉米耐盐性鉴定分析 | 第20-26页 |
2.1 实验材料 | 第20页 |
2.1.1 植物材料 | 第20页 |
2.1.2 主要试剂和仪器 | 第20页 |
2.2 实验方法 | 第20-22页 |
2.2.1 种子萌发 | 第20-21页 |
2.2.2 幼苗培养 | 第21页 |
2.2.3 测定项目 | 第21页 |
2.2.4 统计分析 | 第21-22页 |
2.3 结果与分析 | 第22-24页 |
2.3.1 不同盐浓度胁迫对天塔五号及其父母本种子萌发的影响 | 第22-23页 |
2.3.2 不同盐浓度胁迫对天塔五号及其父母本幼苗生长的影响 | 第23-24页 |
2.4 讨论 | 第24-26页 |
第三章 盐胁迫条件下玉米生理生化特性研究 | 第26-39页 |
3.1 实验材料 | 第26-27页 |
3.1.1 植物实验材料 | 第26页 |
3.1.2 试剂和仪器 | 第26-27页 |
3.2 实验方法 | 第27-31页 |
3.2.1 幼苗培养方法 | 第27页 |
3.2.2 光合指标测定方法 | 第27页 |
3.2.3 丙二醛含量测定方法 | 第27-28页 |
3.2.4 叶绿素含量测定方法 | 第28页 |
3.2.5 游离脯氨酸含量测定方法 | 第28-29页 |
3.2.6 可溶性蛋白测定方法 | 第29-30页 |
3.2.7 类胡萝卜素提取方法 | 第30-31页 |
3.2.8 高效液相色谱法检测类胡萝卜素各组分含量 | 第31页 |
3.3 结果与分析 | 第31-37页 |
3.3.1 盐胁迫对天塔五号及其父母本光合作用的影响 | 第31-33页 |
3.3.2 盐胁迫对天塔五号及其父母本丙二醛含量的影响 | 第33页 |
3.3.3 盐胁迫对天塔五号及其父母本叶绿素含量的影响 | 第33-34页 |
3.3.4 盐胁迫对天塔五号及其父母本游离脯氨酸含量的影响 | 第34-35页 |
3.3.5 盐胁迫对天塔五号及其父母本可溶性蛋白含量的影响 | 第35-36页 |
3.3.6 盐胁迫对天塔五号及其父母本类胡萝卜素含量的影响 | 第36-37页 |
3.4 讨论 | 第37-39页 |
第四章 盐胁迫条件下玉米差异表达基因分析 | 第39-64页 |
4.1 实验材料 | 第39-40页 |
4.1.1 植物材料 | 第39页 |
4.1.2 主要试剂和仪器 | 第39-40页 |
4.2 实验方法 | 第40-43页 |
4.2.1 玉米幼苗培养和盐处理 | 第40页 |
4.2.2 Trizol法提取玉米叶片RNA | 第40-41页 |
4.2.3 反转录合成cDNA | 第41-42页 |
4.2.4 用qRT-PCR方法检测基因相对表达量 | 第42-43页 |
4.3 结果与分析 | 第43-62页 |
4.3.1 玉米转录组数据分析 | 第43-55页 |
4.3.2 玉米叶片RNA提取及cDNA合成 | 第55-56页 |
4.3.3 萜类合成途径相关基因差异表达分析 | 第56-58页 |
4.3.4 水通道蛋白基因差异表达分析 | 第58-62页 |
4.4 讨论 | 第62-64页 |
第五章 结论与展望 | 第64-66页 |
5.1 结论 | 第64页 |
5.2 展望 | 第64-66页 |
参考文献 | 第66-72页 |
发表论文和科研情况说明 | 第72-73页 |
致谢 | 第73-74页 |