| 摘要 | 第10-13页 |
| Abstract | 第13-16页 |
| 第一章 前言 | 第17-34页 |
| 1.1 研究背景 | 第17-18页 |
| 1.2 相关概念 | 第18-21页 |
| 1.2.1 湿地 | 第18-19页 |
| 1.2.2 湿地修复重建 | 第19-20页 |
| 1.2.3 人工湿地 | 第20-21页 |
| 1.3 湿地植物资源开发利用研究进展 | 第21-24页 |
| 1.3.1 人工湿地植物 | 第21-23页 |
| 1.3.2 南四湖湿地植物资源开发利用 | 第23-24页 |
| 1.4 植物活性天然产物资源 | 第24-32页 |
| 1.4.1 天然产物研究概述 | 第24-27页 |
| 1.4.2 植物天然产物资源种类 | 第27-30页 |
| 1.4.3 植物天然产物抗癌研究 | 第30-32页 |
| 1.5 研究目的及意义 | 第32-34页 |
| 第二章 研究区域与方法 | 第34-40页 |
| 2.1 南四湖流域及新薛河人工湿地概况 | 第34-38页 |
| 2.2 调查地点及方法 | 第38-40页 |
| 第三章 人工湿地优势种植物资源抗肿瘤活性筛选 | 第40-53页 |
| 3.1 植物材料准备 | 第40-41页 |
| 3.2 实验仪器材料及方法 | 第41-45页 |
| 3.2.1 实验仪器及试剂 | 第41-42页 |
| 3.2.2 植物总次生代谢产物提取 | 第42-43页 |
| 3.2.3 植物提取物抗肿瘤活性实验 | 第43-44页 |
| 3.2.4 空心莲子草提取物高效液相分析 | 第44-45页 |
| 3.3 实验结果 | 第45-49页 |
| 3.3.1 湿地植物提取物对肿瘤细胞PC3的抑制作用 | 第45-46页 |
| 3.3.2 湿地植物提取物对肿瘤细胞U2OS的抑制作用 | 第46-47页 |
| 3.3.3 空心莲子草幼苗提取物补充肿瘤活性实验 | 第47-49页 |
| 3.4 讨论 | 第49-52页 |
| 3.5 本章小结 | 第52-53页 |
| 第四章 湿地植物荇菜抗癌活性筛选 | 第53-67页 |
| 4.1 实验材料及方法 | 第53-57页 |
| 4.1.1 植物材料 | 第53页 |
| 4.1.2 实验仪器及试剂药品 | 第53-54页 |
| 4.1.3 荇菜次生代谢产物提取及分离 | 第54-56页 |
| 4.1.4 荇菜提取物高效液相分析 | 第56页 |
| 4.1.5 荇菜提取物肿瘤细胞抑制活性实验 | 第56页 |
| 4.1.6 荇菜提取物活性部分成份分析 | 第56-57页 |
| 4.2 实验结果 | 第57-64页 |
| 4.2.1 荇菜提取物液相分析结果 | 第57-59页 |
| 4.2.2 荇菜提取物肿瘤细胞抑制活性评价 | 第59-61页 |
| 4.2.3 荇菜提取物活性部分成份分析 | 第61-64页 |
| 4.3 讨论 | 第64-66页 |
| 4.4 本章小结 | 第66-67页 |
| 第五章 湿地植物菹草的抗肿瘤活性筛选 | 第67-88页 |
| 5.1 研究方法 | 第67-73页 |
| 5.1.1 植物材料准备 | 第67页 |
| 5.1.2 主要实验仪器及材料 | 第67-68页 |
| 5.1.3 菹草次生代谢产物提取分离及鉴定 | 第68-70页 |
| 5.1.4 肿瘤细胞培养 | 第70-71页 |
| 5.1.5 菹草提取物对肿瘤细胞抑制活性评价实验 | 第71页 |
| 5.1.6 菹草提取物对肿瘤细胞形态影响 | 第71页 |
| 5.1.7 菹草提取物对肿瘤细胞细胞周期进程的影响 | 第71-72页 |
| 5.1.8 菹草提取物肿瘤细胞凋亡实验 | 第72-73页 |
| 5.1.9 菹草提取物对L929细胞迁移运动的影响 | 第73页 |
| 5.2 实验结果 | 第73-81页 |
| 5.2.1 菹草EtOAc提取物对ES-2,MDA-MB-231肿瘤细胞的抑制作用 | 第73-76页 |
| 5.2.2 菹草EtOAc提取物改变MDA-MB-231肿瘤细胞形态 | 第76-77页 |
| 5.2.3 菹草EtOAc提取物阻滞MDA-MB-231肿瘤细胞细胞周期进程 | 第77-78页 |
| 5.2.4 菹草EtOAc提取物诱导MDA-MB-231凋亡及坏死 | 第78-81页 |
| 5.2.5 菹草提取物对L929细胞迁移能力的影响 | 第81页 |
| 5.3 讨论 | 第81-86页 |
| 5.4 本章小结 | 第86-88页 |
| 第六章 菹草黄酮类化合物抑制肿瘤活性研究 | 第88-108页 |
| 6.1 实验方法及材料 | 第88-94页 |
| 6.1.1 主要实验仪器及试剂 | 第88-89页 |
| 6.1.2 细胞增殖抑制测试 | 第89-90页 |
| 6.1.3 细胞形态观测 | 第90-91页 |
| 6.1.4 细胞周期分析实验 | 第91页 |
| 6.1.5 细胞凋亡分析实验 | 第91页 |
| 6.1.6 细胞迁移实验 | 第91-92页 |
| 6.1.7 细胞侵袭实验 | 第92页 |
| 6.1.8 细胞总RNA提取及RT-PCR实验 | 第92-93页 |
| 6.1.9 细胞蛋白表达Western blotting实验 | 第93-94页 |
| 6.2 实验结果 | 第94-103页 |
| 6.2.1 菹草黄酮苷LU3'O-GP对ES-2肿瘤细胞的抑制作用 | 第94-95页 |
| 6.2.2 菹草黄酮苷LU3'O-GP对ES-2肿瘤细胞形态的影响 | 第95-96页 |
| 6.2.3 菹草黄酮苷LU3'O-GP对ES-2肿瘤细胞细胞周期的影响 | 第96-97页 |
| 6.2.4 菹草黄酮苷LU3'O-GP对ES-2肿瘤细胞凋亡的影响 | 第97-99页 |
| 6.2.5 菹草黄酮苷LU3'O-GP对ES-2肿瘤细胞迁移及侵袭的抑制作用 | 第99-103页 |
| 6.3 讨论 | 第103-107页 |
| 6.4 本章小结 | 第107-108页 |
| 第七章 研究总结及展望 | 第108-112页 |
| 7.1 研究总结 | 第108-110页 |
| 7.2 研究创新点 | 第110-111页 |
| 7.3 研究中的不足及展望 | 第111-112页 |
| 参考文献 | 第112-131页 |
| 致谢 | 第131-133页 |
| 博士期间的学术成果 | 第133-134页 |
| 附件 | 第134-143页 |
