| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4页 |
| 第一章 绪论 | 第8-24页 |
| 1.1 引言 | 第8-9页 |
| 1.2 神经营养因子的种类 | 第9-11页 |
| 1.2.1 神经营养生长因子（NGF） | 第9-10页 |
| 1.2.2 脑源性神经营养因子（BDNF） | 第10页 |
| 1.2.3 神经营养素-3（NT-3） | 第10-11页 |
| 1.3 基因递送体系 | 第11-13页 |
| 1.4 阳离子聚合物基因载体 | 第13-21页 |
| 1.4.1 阳离子聚合物基因载体的常见类型 | 第14-16页 |
| 1.4.2 阳离子聚合物基因载体的主要修饰方法 | 第16-21页 |
| 1.5 本论文主要研究内容 | 第21-24页 |
| 第二章 壳聚糖-聚乙烯亚胺-聚乙二醇-功能肽的制备和表征 | 第24-43页 |
| 2.1 引言 | 第24页 |
| 2.2 实验部分 | 第24-31页 |
| 2.2.1 实验试剂与仪器 | 第24-26页 |
| 2.2.2 壳聚糖-聚乙烯亚胺-聚乙二醇-功能肽的合成路线 | 第26-27页 |
| 2.2.3 氧化壳聚糖（OCS）的合成和表征 | 第27-28页 |
| 2.2.4 壳聚糖-聚乙烯亚胺（CS-g-PEI）的合成和表征 | 第28页 |
| 2.2.5 聚乙二醇-功能肽（PEG -PEP）的合成和表征 | 第28页 |
| 2.2.6 CS-g-PEI-PEG-PEP（CPPP）的合成和表征 | 第28-29页 |
| 2.2.7 GFP质粒的提取 | 第29页 |
| 2.2.8 CPPP/DNA复合物的制备 | 第29页 |
| 2.2.9 CPPP/DNA复合物电位和粒径的检测 | 第29页 |
| 2.2.10 凝胶电泳实验 | 第29页 |
| 2.2.11 CP/DNA和CPPP/DNA复合物表面形态的表征 | 第29-30页 |
| 2.2.12 体外毒性实验 | 第30页 |
| 2.2.13 体外细胞转染实验 | 第30-31页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第31-42页 |
| 2.3.1 OCS的核磁谱图 | 第31-32页 |
| 2.3.2 CS-g-PEI的核磁谱图和红外谱图 | 第32-33页 |
| 2.3.3 CS-g-PEI-PEG-PEP的核磁谱图 | 第33-34页 |
| 2.3.4 GFP质粒纯度 | 第34-35页 |
| 2.3.5 CPPP/DNA复合物的Zeta电位和粒径 | 第35-36页 |
| 2.3.6 CP/DNA和CPPP/DNA复合物的TEM形貌 | 第36-37页 |
| 2.3.7 CPPP包裹保护DNA的能力 | 第37-38页 |
| 2.3.8 生物相容性评价 | 第38-40页 |
| 2.3.9 体外转染效率评价 | 第40-42页 |
| 2.4 本章小结 | 第42-43页 |
| 第三章 壳聚糖-聚乙烯亚胺-聚乙二醇-功能肽介导的NT-3 基因转染促神经干细胞分化研究 | 第43-52页 |
| 3.1 引言 | 第43-44页 |
| 3.2 实验部分 | 第44-47页 |
| 3.2.1 实验试剂与仪器 | 第44-45页 |
| 3.2.2 NT-3 质粒的构建和抽提 | 第45页 |
| 3.2.3 受体细胞中NT-3 表达水平的检测 | 第45-46页 |
| 3.2.4 转染后 293T细胞来源的NT-3 促NSC早期分化的初步探究 | 第46-47页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第47-51页 |
| 3.3.1 NT-3 质粒纯度 | 第47页 |
| 3.3.2 受体细胞中NT-3 的表达水平 | 第47-49页 |
| 3.3.3 转染后 293T细胞来源的NT-3 对NSC早期分化比例的影响 | 第49-50页 |
| 3.3.4 转染后 293T细胞来源的NT-3 对早期分化神经元轴突生长的影响 | 第50-51页 |
| 3.4 本章小结 | 第51-52页 |
| 第四章 全文总结 | 第52-54页 |
| 4.1 本论文的主要研究内容 | 第52-53页 |
| 4.2 本文存在的问题及工作展望 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-62页 |
| 在校期间发表论文和科研成果 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
