| 英文缩略词对照(Abbreviation) | 第7-9页 |
| 中文摘要 | 第9-13页 |
| Abstract | 第13-16页 |
| 1 前言 | 第17-18页 |
| 2 实验材料 | 第18-20页 |
| 2.1 动物 | 第18-19页 |
| 2.2 药物 | 第19页 |
| 2.3 试剂 | 第19-20页 |
| 2.4 仪器与设备 | 第20页 |
| 3. 实验方法 | 第20-27页 |
| 3.1 大鼠AA模型的建立 | 第20页 |
| 3.2 动物分组 | 第20页 |
| 3.3 给药时间和给药方法 | 第20-21页 |
| 3.4 全身评分测定 | 第21页 |
| 3.5 病理组织学检测 | 第21页 |
| 3.6 滑膜细胞上清中细胞因子水平的检测 | 第21页 |
| 3.7 免疫器官和免疫细胞及FLS中BLyS及其受体TACI、BCMA和BAFF-R mRNA表达的测定 | 第21-25页 |
| 3.7.1 组织总RNA的提取 | 第21-22页 |
| 3.7.2 细胞总RNA的提取 | 第22-23页 |
| 3.7.3 逆转录 | 第23-24页 |
| 3.7.4 Q-PCR | 第24-25页 |
| 3.8 细胞增殖反应的检测 | 第25页 |
| 3.8.1 胸腺T细胞增殖反应 | 第25页 |
| 3.8.2 FLS增殖反应 | 第25页 |
| 3.9 流式细胞术检测BAFF-R、TACI、BCMA在肠系膜淋巴结CD4~（+）T细胞和FLS的表达 | 第25-26页 |
| 3.10 流式细胞术检测脾脏T细胞亚群的比例 | 第26页 |
| 3.11 共培养系统 | 第26-27页 |
| 3.11.1 免疫磁珠技术分选正常大鼠脾脏CD4~+T细胞 | 第26页 |
| 3.11.2 共培养 | 第26-27页 |
| 3.12 统计学处理 | 第27页 |
| 4. 实验结果 | 第27-47页 |
| 4.1 BLyS及其受体BAFF-R、TACI、BCMA在AA大鼠各免疫器官、免疫细胞和FLS中的表达 | 第27-34页 |
| 4.1.1 BLyS及其受体BAFF-R、TACI、BCMA mRNA在AA大鼠外周淋巴器官中的表达 | 第28-29页 |
| 4.1.2 BLyS及其受体BAFF-R、TACI、BCMA在AA大鼠免疫细胞中的表达 | 第29-32页 |
| 4.1.3 BAFF-R、TACI、BCMA在AA大鼠FLS中的表达 | 第32-34页 |
| 4.2 CP-25体外对AA大鼠胸腺T细胞增殖功能的影响 | 第34页 |
| 4.3 CP-25体外对正常和大鼠AA滑膜细胞增殖功能的影响 | 第34-36页 |
| 4.4 BLyS刺激的正常大鼠脾脏CD4~+T细胞与AA大鼠FLS共培养对FLS增殖和分泌功能的影响及CP-25的作用 | 第36-39页 |
| 4.4.1 BLyS刺激的正常大鼠脾脏CD4~+T细胞与AA大鼠FLS共培养对FLS增殖的影响以及CP-25的作用 | 第36-37页 |
| 4.4.2 BLyS刺激的正常大鼠脾脏CD4~（+）T细胞与AA大鼠FLS共培养对FLS分泌细胞因子IL-1β、TNF-α和IL-6水平的影响及CP-25的作用 | 第37-39页 |
| 4.5 CP-25对AA大鼠全身评分和脾脏病理学的影响 | 第39-41页 |
| 4.5.1 CP-25对AA大鼠全身评分的影响 | 第39-40页 |
| 4.5.2 CP-25对AA大鼠脾脏病理学的影响 | 第40-41页 |
| 4.6 CP-25对AA大鼠脾脏CD4~+T细胞亚群比例的作用 | 第41-45页 |
| 4.7 CP-25整体给药对AA大鼠FLS上清炎性细胞因子分泌的影响 | 第45-47页 |
| 5. 讨论 | 第47-53页 |
| 5.1 BLyS及其受体参与了T细胞介导的大鼠AA | 第47-49页 |
| 5.2 CP-25调节AA大鼠T细胞和FLS的相互作用可能是其发挥治疗作用的机制之一 | 第49-51页 |
| 5.3 CP-25对大鼠AA具有治疗作用 | 第51-53页 |
| 6 结论 | 第53-54页 |
| 7. 参考文献 | 第54-60页 |
| 附录 个人简历 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61-63页 |
| 综述 | 第63-77页 |
| 参考文献 | 第69-77页 |
