| 摘要 | 第7-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-23页 |
| 1.1 生长抑素在脊椎动物的进化 | 第13-15页 |
| 1.1.1 脊椎动物生长抑素的研究 | 第13-14页 |
| 1.1.2 脊椎动物SS的系统进化分析 | 第14页 |
| 1.1.3 六个SS基因在斑马鱼的不同组织的表达模式 | 第14-15页 |
| 1.2 SS家族多肽 | 第15-17页 |
| 1.2.1 SS1 | 第15页 |
| 1.2.2 SS2/CST | 第15-16页 |
| 1.2.3 SS3 | 第16页 |
| 1.2.4 SS4 | 第16页 |
| 1.2.5 SS5 | 第16-17页 |
| 1.2.6 SS6 | 第17页 |
| 1.2.7 其他SS相关基因 | 第17页 |
| 1.3 SS家族受体 | 第17-19页 |
| 1.3.1 SS受体的特性 | 第17-18页 |
| 1.3.2 SS受体的进化 | 第18-19页 |
| 1.4 生长抑素功能 | 第19-21页 |
| 1.4.1 SS1功能 | 第19-20页 |
| 1.4.2 SS2/SCT功能 | 第20-21页 |
| 1.4.3 其他SS相关基因的功能 | 第21页 |
| 1.5 高通量基因表达谱的应用 | 第21-23页 |
| 1.5.1 数字基因表达谱的原理 | 第21-22页 |
| 1.5.2 数字基因表达谱的特点 | 第22页 |
| 1.5.3 数字基因表达谱的应用 | 第22-23页 |
| 第二章 绪论 | 第23-25页 |
| 2.1 选题背景与意义 | 第23页 |
| 2.2 研究内容与技术路线 | 第23-25页 |
| 2.2.1 研究内容 | 第23-24页 |
| 2.2.2 技术路线 | 第24-25页 |
| 第三章 实验材料与方法 | 第25-37页 |
| 3.1 材料和试剂 | 第25-29页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第25页 |
| 3.1.2 菌种及质粒 | 第25-26页 |
| 3.1.3 主要试剂及酶类 | 第26页 |
| 3.1.4 主要试剂的配制 | 第26-28页 |
| 3.1.5 主要仪器 | 第28-29页 |
| 3.2 实验方法 | 第29-37页 |
| 3.2.1 MOs的合成引物设计 | 第29页 |
| 3.2.2 SS1表达质粒的构建 | 第29-30页 |
| 3.2.3 SS1 mRNA的体外转录及显微注射 | 第30-33页 |
| 3.2.4 斑马鱼胚胎总RNA的提取及检测 | 第33页 |
| 3.2.5 表达谱文库的构建及测序 | 第33页 |
| 3.2.6 表达谱测序数据的评估 | 第33-34页 |
| 3.2.7 基因表达水平分析 | 第34页 |
| 3.2.8 差异表达分析 | 第34-35页 |
| 3.2.9 差异基因GO富集分析 | 第35页 |
| 3.2.10 差异基因KEGG富集分析 | 第35-37页 |
| 第四章 实验结果分析与讨论 | 第37-63页 |
| 4.1 实验结果 | 第37-57页 |
| 4.1.1 SS1 capped mRNA的体外转录 | 第37页 |
| 4.1.2 显微注射与表型分析 | 第37-39页 |
| 4.1.3 总RNA提取质量检测 | 第39-40页 |
| 4.1.4 DGE测序数据的产出和表达谱reads的注释 | 第40-41页 |
| 4.1.5 实验的可重复性 | 第41-43页 |
| 4.1.6 差异基因聚类分析 | 第43-44页 |
| 4.1.7 差异表达基因筛选 | 第44-46页 |
| 4.1.8 共有差异基因的筛选 | 第46-57页 |
| 4.2 讨论与分析 | 第57-63页 |
| 4.2.1 MOs和RNA营救实验在基因功能研究中的应用 | 第57页 |
| 4.2.2 高通量基因表达谱在基因功能研究中的应用 | 第57-58页 |
| 4.2.3 分析SS1在斑马鱼发育中的功能 | 第58-63页 |
| 第五章 结论 | 第63-65页 |
| 参考文献 | 第65-75页 |
| 致谢 | 第75-77页 |
| 攻读硕士学位期间发表论文及参与科研项目 | 第77页 |
