| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 1 绪论 | 第12-24页 |
| 1.1 研究背景与意义 | 第12-13页 |
| 1.2 天然水体中抗生素的光化学行为 | 第13-17页 |
| 1.2.1 光化学反应的机理 | 第13页 |
| 1.2.2 水环境因子对抗生素光化学行为的影响 | 第13-17页 |
| 1.2.2.1 水体pH | 第14-15页 |
| 1.2.2.2 溶解性有机质(DOM) | 第15-16页 |
| 1.2.2.3 具有光化学活性的无机离子 | 第16-17页 |
| 1.3 抗生素的环境水平、环境行为与生态效应 | 第17-22页 |
| 1.3.1 抗生素的环境来源和水平 | 第17-19页 |
| 1.3.2 我国抗生素和抗性基因污染现状 | 第19-20页 |
| 1.3.3 抗生素的环境行为和生态效应 | 第20-22页 |
| 1.3.3.1 抗生素的环境行为 | 第20-21页 |
| 1.3.3.2 抗生素的生态效应 | 第21-22页 |
| 1.4 选题的依据、意义和研究内容 | 第22-24页 |
| 1.4.1 选题依据、意义 | 第22页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第22-24页 |
| 2 磺胺二甲嘧啶在水溶液中的光化学降解 | 第24-38页 |
| 2.1 引言 | 第24页 |
| 2.2 实验部分 | 第24-29页 |
| 2.2.1 实验试剂与仪器 | 第24-25页 |
| 2.2.1.1 实验试剂 | 第24页 |
| 2.2.1.2 实验仪器 | 第24-25页 |
| 2.2.2 光化学降解实验 | 第25-27页 |
| 2.2.2.1 SM_2标准母液的配制 | 第25页 |
| 2.2.2.2 不同光源对SM_2光解的影响 | 第25-26页 |
| 2.2.2.3 不同初始浓度对SM_2光解的影响 | 第26页 |
| 2.2.2.4 溶液pH对SM_2光解的影响 | 第26页 |
| 2.2.2.5 淬灭实验 | 第26页 |
| 2.2.2.6 H_2O_2对SM_2光降解的影响 | 第26-27页 |
| 2.2.3 测定和分析 | 第27-29页 |
| 2.2.3.1 SM_2的HPLC分析条件 | 第27页 |
| 2.2.3.2 离子色谱分析 | 第27页 |
| 2.2.3.3 光源发射光谱的测定 | 第27页 |
| 2.2.3.4 溶液紫外-可见吸收光谱的测定 | 第27-28页 |
| 2.2.3.5 光源强度的测定 | 第28-29页 |
| 2.2.4 结果分析与计算 | 第29页 |
| 2.2.4.1 光解动力学方程的拟合 | 第29页 |
| 2.2.4.2 光解率的计算 | 第29页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第29-37页 |
| 2.3.1 标准曲线的绘制 | 第30页 |
| 2.3.2 不同光源对SM_2光解的影响 | 第30-31页 |
| 2.3.3 不同初始浓度对SM_2光解的影响 | 第31-32页 |
| 2.3.4 溶液pH对SM_2光解的影响 | 第32-34页 |
| 2.3.5 淬灭实验 | 第34-35页 |
| 2.3.6 H_2O_2对SM_2光降解的影响 | 第35-37页 |
| 2.4 本章小结 | 第37-38页 |
| 3 DOM与重金属离子对磺胺二甲嘧啶光解的影响 | 第38-55页 |
| 3.1 引言 | 第38页 |
| 3.2 实验部分 | 第38-42页 |
| 3.2.1 实验试剂与仪器 | 第38-39页 |
| 3.2.1.1 实验试剂 | 第38-39页 |
| 3.2.1.2 实验仪器 | 第39页 |
| 3.2.2 光化学实验 | 第39-41页 |
| 3.2.2.1 不同浓度的SRHA和SRFA对SM_2光解的影响 | 第39页 |
| 3.2.2.2 不同浓度Cu(Ⅱ)和SRHA及其络合物对SM_2光解的影响 | 第39-40页 |
| 3.2.2.3 不同浓度Zn(Ⅱ)和SRHA及其络合物对SM_2光解的影响 | 第40页 |
| 3.2.2.4 不同来源的DOM对SM_2光解的影响 | 第40页 |
| 3.2.2.5 不同浓度的沼液对SM_2光解的影响 | 第40-41页 |
| 3.2.3 测定和分析 | 第41-42页 |
| 3.2.3.1 DOC测定 | 第41页 |
| 3.2.3.2 紫外吸收光谱扫描 | 第41-42页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第42-54页 |
| 3.3.1 不同浓度的SRHA和SRFA对SM_2光解的影响 | 第42-44页 |
| 3.3.2 不同浓度Cu(Ⅱ)和SRHA及其络合物对SM_2光解的影响 | 第44-48页 |
| 3.3.3 不同浓度Zn(Ⅱ)和SRHA及其络合物对SM_2光解的影响 | 第48-50页 |
| 3.3.4 不同来源的DOM对SM_2光解的影响 | 第50-52页 |
| 3.3.5 不同浓度的沼液对SM_2光解的影响 | 第52-54页 |
| 3.4 本章小结 | 第54-55页 |
| 4 UV光对沼液中抗性基因活性的影响 | 第55-63页 |
| 4.1 引言 | 第55页 |
| 4.2 实验部分 | 第55-60页 |
| 4.2.1 实验试剂和仪器 | 第55-56页 |
| 4.2.1.1 实验试剂 | 第55-56页 |
| 4.2.1.2 实验仪器 | 第56页 |
| 4.2.2 实验方法 | 第56-60页 |
| 4.2.2.1 沼液光解处理 | 第56页 |
| 4.4.2.2 沼液中DNA的提取 | 第56页 |
| 4.4.2.3 普通PCR反应程序 | 第56-58页 |
| 4.2.2.4 目的片段测序及序列比对 | 第58页 |
| 4.2.2.5 实时荧光定量PCR检测 | 第58-59页 |
| 4.2.2.6 数据统计分析 | 第59-60页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第60-62页 |
| 4.3.1 UV光对四环素抗性基因的影响 | 第60页 |
| 4.3.2 UV光对磺胺类抗性基因的影响 | 第60-61页 |
| 4.3.3 不同光强的汞灯对沼液中抗性基因的影响 | 第61-62页 |
| 4.4 本章小结 | 第62-63页 |
| 5 结论与展望 | 第63-65页 |
| 5.1 主要结论 | 第63-64页 |
| 5.2 展望 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-79页 |
| 致谢 | 第79-81页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第81-82页 |
