| 致谢 | 第7-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第一章 绪论 | 第12-25页 |
| 1.1 虫草简介 | 第12-16页 |
| 1.1.1 虫草的活性物质 | 第12-13页 |
| 1.1.2 虫草的药理作用 | 第13-16页 |
| 1.1.3 虫草的人工培养 | 第16页 |
| 1.2 多糖的生物活性研究 | 第16-20页 |
| 1.2.1 抗氧化活性 | 第17-18页 |
| 1.2.2 抗肿瘤活性 | 第18-19页 |
| 1.2.3 免疫调节活性 | 第19页 |
| 1.2.4 降血糖活性 | 第19-20页 |
| 1.3 多糖的结构研究方法 | 第20-21页 |
| 1.4 中国被毛孢多糖研究概况 | 第21-23页 |
| 1.4.1 中国被毛孢多糖的提取、分离及纯化 | 第21-22页 |
| 1.4.2 中国被毛孢多糖的活性研究 | 第22-23页 |
| 1.4.3 中国被毛孢多糖的结构研究 | 第23页 |
| 1.5 研究目的、意义和主要内容 | 第23-25页 |
| 1.5.1 研究目的及意义 | 第23-24页 |
| 1.5.2 主要内容 | 第24-25页 |
| 第二章 中国被毛孢胞内多糖(HSIPS2)的分离纯化及抗氧化活性研究 | 第25-41页 |
| 材料和方法 | 第26-40页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第26页 |
| 2.1.1 菌株 | 第26页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第26页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第26页 |
| 2.2 方法 | 第26-31页 |
| 2.2.1 培养基制备 | 第26-27页 |
| 2.2.2 菌种发酵培养 | 第27页 |
| 2.2.3 发酵过程中菌丝体生物量及胞内粗多糖含量测定 | 第27-28页 |
| 2.2.4 中国被毛孢胞内多糖的提取 | 第28页 |
| 2.2.5 酶-Sevage法脱蛋白和双氧水法脱色素 | 第28页 |
| 2.2.6 多糖的分离纯化 | 第28-29页 |
| 2.2.7 多糖分子量及纯度测定 | 第29页 |
| 2.2.8 单糖组成 | 第29-30页 |
| 2.2.9 抗氧化活性 | 第30-31页 |
| 2.3 结果与分析 | 第31-40页 |
| 2.3.1 发酵过程中菌丝体生物量及胞内粗多糖含量测定 | 第31-32页 |
| 2.3.2 中国被毛孢胞内多糖的得率 | 第32页 |
| 2.3.3 中国被毛孢胞内多糖的分离纯化 | 第32-34页 |
| 2.3.4 分子量及纯度 | 第34页 |
| 2.3.5 HSIPS2的单糖组成及摩尔比例 | 第34-35页 |
| 2.3.6 抗氧化活性分析 | 第35-40页 |
| 本章小结 | 第40-41页 |
| 第三章 中国被毛孢胞内多糖HSIPS2初级结构及链构象研究 | 第41-56页 |
| 材料和方法 | 第41-55页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第41-42页 |
| 3.1.1 主要试剂 | 第41页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第41-42页 |
| 3.2 方法 | 第42-44页 |
| 3.2.1 红外光谱分析 | 第42页 |
| 3.2.2 甲基化及GC/MS分析 | 第42-43页 |
| 3.2.3 核磁共振光谱分析 | 第43-44页 |
| 3.2.4 HSIPS2在溶液中的链构象 | 第44页 |
| 3.2.5 原子力显微镜观察形貌 | 第44页 |
| 3.3 结果与分析 | 第44-55页 |
| 3.3.1 红外光谱分析 | 第44-45页 |
| 3.3.2 甲基化分析 | 第45-46页 |
| 3.3.3 核磁分析 | 第46-50页 |
| 3.3.4 链构象分析 | 第50-53页 |
| 3.3.5 HSIPS2在原子力显微镜下的形貌 | 第53-55页 |
| 本章小结 | 第55-56页 |
| 第四章 结论与创新点 | 第56-58页 |
| 4.1 全文结论 | 第56-57页 |
| 4.2 全文创新点 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-71页 |
| 硕士期间科研成果 | 第71页 |
