中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
中英文缩写词 | 第13-14页 |
文献综述 | 第14-24页 |
1 黄芪的临床作用 | 第14-16页 |
1.1 黄芪的研究 | 第14页 |
1.2 黄芪甲苷 | 第14-15页 |
1.3 黄芪多糖 | 第15页 |
1.4 黄芪黄酮 | 第15-16页 |
2 RAW264.7细胞及NF-κB/丝裂原活化蛋白酶(MAPK)信号通路 | 第16-20页 |
2.1 RAW264.7 细胞 | 第16页 |
2.2 NF-κB信号通路 | 第16-19页 |
2.3 MAPK信号通路 | 第19-20页 |
3 细胞周期和表面共刺激因子 | 第20-22页 |
3.1 表面共刺激分子 | 第20-21页 |
3.2 细胞周期 | 第21-22页 |
4 黄芪与NF-κB/MAPK信号通路 | 第22-24页 |
引言 | 第24-25页 |
1 材料与方法 | 第25-36页 |
1.1 材料 | 第25-26页 |
1.1.1 细胞 | 第25页 |
1.1.2 仪器设备 | 第25页 |
1.1.3 药物及试剂 | 第25-26页 |
1.2 试验方法 | 第26-36页 |
1.2.1 RAW264.7 细胞培养 | 第26页 |
1.2.2 试验分组及处理 | 第26-27页 |
1.2.3 最佳添加浓度的筛选 | 第27页 |
1.2.4 CCK-8 法测定细胞活性 | 第27页 |
1.2.5 ELISA法测定IL-1β、IL-6、TNF-α 和NO的含量 | 第27-28页 |
1.2.6 q RT-PCR法测定IL-1β、IL-6、TNF-α 和iNOS的mRNA表达水平 | 第28-29页 |
1.2.7 细胞表面刺激因子的测定 | 第29-30页 |
1.2.8 细胞周期的测定 | 第30页 |
1.2.9 western blotting法测定NF-κB/MAPK信号通路相关蛋白表达 | 第30-32页 |
1.2.10 EMSA法测定p65蛋白入核表达 | 第32-35页 |
1.2.11 数据处理 | 第35-36页 |
2 结果与分析 | 第36-60页 |
2.1 黄芪甲苷通过活化NF-κB/MAPK信号通路发挥免疫增强作用 | 第36-45页 |
2.1.1 ASIV最佳添加浓度筛选 | 第36-37页 |
2.1.2 细胞形态学观察 | 第37页 |
2.1.3 细胞活性测定结果 | 第37-38页 |
2.1.4 ASIV对IL-1β、IL-6、TNF-α 和NO含量及mRNA表达的影响 | 第38-40页 |
2.1.5 表面刺激因子含量的变化 | 第40-42页 |
2.1.6 ASIV对细胞增殖的影响 | 第42-44页 |
2.1.7 NF-κB/MAPK通路相关蛋白的变化 | 第44-45页 |
2.2 黄芪多糖通过活化NF-κB信号通路发挥免疫增强的作用 | 第45-52页 |
2.2.1 APS最佳添加浓度筛选 | 第45-46页 |
2.2.2 细胞活性测定结果 | 第46页 |
2.2.3 APS对IL-1β、IL-6、TNF-α 和NO含量及mRNA表达的影响 | 第46-48页 |
2.2.4 表面刺激因子含量的变化 | 第48-50页 |
2.2.5 APS对细胞增殖的影响 | 第50-51页 |
2.2.6 EMSA法测定p65蛋白入核表达 | 第51-52页 |
2.3 黄芪黄酮对RAW264.7 细胞免疫功能的影响 | 第52-60页 |
2.3.1 FAC最佳添加浓度筛选 | 第52-53页 |
2.3.2 细胞活性测定结果 | 第53-54页 |
2.3.3 FAC对IL-1β、IL-6、TNF-α 和NO含量及mRNA表达的影响 | 第54-55页 |
2.3.4 表面刺激因子含量的变化 | 第55-57页 |
2.3.5 FAC对细胞增殖的影响 | 第57-58页 |
2.3.6 NF-κB通路相关蛋白的变化 | 第58-60页 |
3 讨论 | 第60-64页 |
3.1 黄芪甲苷通过活化NF-κB/MAPK信号通路发挥免疫增强的作用 | 第60-61页 |
3.2 黄芪多糖通过活化NF-κB信号通路发挥免疫增强的作用 | 第61-62页 |
3.3 黄芪黄酮对RAW264.7 细胞免疫功能的影响 | 第62-64页 |
4 结论 | 第64-65页 |
参考文献 | 第65-74页 |
致谢 | 第74-75页 |
作者简介 | 第75页 |