| 缩略词 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 前言 | 第13-17页 |
| 第一章 MTT法检测灯盏花素对Chang liver、HepG2及Caco-2 三种细胞的细胞毒作用 | 第17-24页 |
| 1 实验材料 | 第17页 |
| 1.1 主要实验仪器 | 第17页 |
| 1.2 主要试剂 | 第17页 |
| 1.3 细胞株 | 第17页 |
| 2 实验方法 | 第17-20页 |
| 2.1 细胞培养 | 第17-19页 |
| 2.2 种板密度筛选 | 第19页 |
| 2.3 MTT法检测灯盏花素对HepG2、Caco-2 及Chang liver细胞的影响 | 第19页 |
| 2.4 计算细胞生长抑制率和细胞存活率 | 第19-20页 |
| 2.5 统计学方法 | 第20页 |
| 3 结果 | 第20-24页 |
| 3.1 灯盏花素对Chang liver细胞的增殖抑制影响 | 第20-21页 |
| 3.2 灯盏花素对HepG2细胞的增殖抑制影响 | 第21-22页 |
| 3.3 灯盏花素对Caco-2 细胞的增殖抑制影响 | 第22-23页 |
| 3.4 给药浓度的筛选 | 第23-24页 |
| 第二章 灯盏花素对Chang liver细胞系中药物代谢酶及核受体表达的影响研究 | 第24-46页 |
| 1 实验材料 | 第24-25页 |
| 1.1 主要实验仪器 | 第24页 |
| 1.2 主要试剂 | 第24页 |
| 1.3 细胞株 | 第24-25页 |
| 2 实验方法 | 第25-37页 |
| 2.1 药物处理 | 第25页 |
| 2.2 Chang liver细胞总RNA提取 | 第25-26页 |
| 2.3 逆转录 | 第26-27页 |
| 2.4 实时荧光定量PCR | 第27-31页 |
| 2.5 琼脂糖凝胶电泳验证PCR产物 | 第31-32页 |
| 2.6 Western-blot检测灯盏花素对Chang liver细胞中CYP2C19蛋白的表达水平 | 第32-37页 |
| 2.7 统计分析 | 第37页 |
| 3 结果 | 第37-46页 |
| 3.1 灯盏花素对Chang liver细胞中CYP3A4、CYP2C19及上游调控基因PXR、CAR mRNA表达水平的影响 | 第37-44页 |
| 3.2 灯盏花素对Chang liver细胞中CYP2C19蛋白表达的影响 | 第44-46页 |
| 第三章 灯盏花素通过核受体PXR、CAR对CYP3A4、CYP2C19启动子活性的影响 | 第46-60页 |
| 1 实验材料 | 第46页 |
| 1.1 主要实验仪器 | 第46页 |
| 1.2 主要试剂 | 第46页 |
| 1.3 细胞株 | 第46页 |
| 2 实验方法 | 第46-52页 |
| 2.1 DH5α感受态细胞的制备 | 第46-48页 |
| 2.2 质粒的转化 | 第48页 |
| 2.3 质粒的扩增 | 第48-49页 |
| 2.4 质粒的提取 | 第49-50页 |
| 2.5 1%琼脂糖凝胶电泳验证质粒 | 第50页 |
| 2.6 瞬时共转染及报告基因检测 | 第50-52页 |
| 3 结果 | 第52-60页 |
| 3.1 质粒鉴定结果 | 第52页 |
| 3.2 瞬时共转染体系优化 | 第52-55页 |
| 3.3 报告基因检测结果 | 第55-60页 |
| 讨论 | 第60-64页 |
| 结论 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-70页 |
| 发表文章情况 | 第70-71页 |
| 综述 常见中药组分对孕烷X受体介导的CYP3A4转录调节机制的研究进展 | 第71-81页 |
| 参考文献 | 第78-81页 |
| 致谢 | 第81页 |
