| 中文摘要 | 第6-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 英文缩略词表 | 第12-13页 |
| 前言 | 第13-16页 |
| 第一部分 醒鼻凝胶剂干预AR豚鼠模型对Fyn-STAT5信号通路影响的实验研究 | 第16-37页 |
| 1 实验材料 | 第16页 |
| 1.1 实验药物 | 第16页 |
| 1.2 实验动物 | 第16页 |
| 1.3 实验试剂 | 第16页 |
| 1.4 实验仪器 | 第16页 |
| 1.5 主要试剂的配制 | 第16页 |
| 2 实验方法 | 第16-24页 |
| 2.1 变应性鼻炎豚鼠的建立与鉴定 | 第16-17页 |
| 2.2 给药干预 | 第17页 |
| 2.3 动物取材与标本制备 | 第17-18页 |
| 2.4 HE染色 | 第18-19页 |
| 2.5 免疫组化方法检测豚鼠鼻黏膜CD19、CD23的表达 | 第19页 |
| 2.6 real-time PCR方法检测豚鼠鼻黏膜TGF-β1、MCP-1、MMP10mRNA含量 | 第19-21页 |
| 2.7 ELSA方法检测豚鼠血清中IL-10、MMP10水平 | 第21-22页 |
| 2.8 Western blot法检测豚鼠鼻粘膜组织中Fyn和STAT5的表达 | 第22-24页 |
| 3 实验结果 | 第24-29页 |
| 3.1 AR豚鼠模型鉴定 | 第24-25页 |
| 3.2 各组豚鼠鼻黏膜的改变情况(光镜下) | 第25页 |
| 3.3 各组豚鼠鼻黏膜组织CD19的表达 | 第25-26页 |
| 3.4 各组豚鼠鼻黏膜组织CD23的表达 | 第26-27页 |
| 3.5 各组豚鼠血清IL-10、MMP10的水平变化 | 第27页 |
| 3.6 各组豚鼠鼻黏膜MMP10、TGF-β1及MCP-1 mRNA的表达 | 第27-28页 |
| 3.7 各组豚鼠鼻黏膜Fyn-STAT5信号通路的变化 | 第28-29页 |
| 4 讨论 | 第29-36页 |
| 4.1 中医对AR的认识 | 第29-31页 |
| 4.2 醒鼻凝胶滴鼻剂治疗AR的前期研究概况 | 第31-32页 |
| 4.3 AR的现代研究概况 | 第32-34页 |
| 4.4 本实验结果的研究分析 | 第34-36页 |
| 5 小结 | 第36-37页 |
| 第二部分 醒鼻凝胶滴鼻剂干预AR大鼠模型对鼻黏膜成纤维细胞Fyn-STAT5信号通路的影响 | 第37-54页 |
| 1 实验材料 | 第37-38页 |
| 1.1 实验药物 | 第37页 |
| 1.2 实验动物 | 第37页 |
| 1.3 实验试剂 | 第37页 |
| 1.4 实验仪器 | 第37页 |
| 1.5 主要试剂的配制 | 第37-38页 |
| 2 实验方法 | 第38-43页 |
| 2.1 NF-κB基因敲除大鼠的构建 | 第38-39页 |
| 2.2 AR大鼠及NF-κB基因敲除AR大鼠的模型建立 | 第39页 |
| 2.3 鼻黏膜成纤维细胞的分离培养及鉴定 | 第39-40页 |
| 2.4 细胞分组及TGF-β1浓度筛选 | 第40-41页 |
| 2.5 TGF-β1对Fyn-STAT5信号通路的作用 | 第41页 |
| 2.6 体外药物干预 | 第41页 |
| 2.7 Western blot检测成纤维细胞Fyn-STAT5信号通路的变化 | 第41-43页 |
| 3 实验结果 | 第43-49页 |
| 3.1 成纤维细胞形态学鉴定结果 | 第43-44页 |
| 3.2 成纤维细胞免疫细胞化学鉴定结果 | 第44-45页 |
| 3.3 TGF-β1浓度筛选结果 | 第45页 |
| 3.4 NF-κB对Fyn-STAT5信号通路的影响 | 第45-46页 |
| 3.5 TGF-β1对Fyn-STAT5信号通路的影响 | 第46-47页 |
| 3.6 醒鼻凝胶对体外成纤维细胞Fyn-STAT5信号通路的影响 | 第47-49页 |
| 4 讨论 | 第49-53页 |
| 4.1 Fyn-STAT5信号通路在AR发病中的作用机制 | 第49-50页 |
| 4.2 NF-κB和TGF-β1与AR | 第50-51页 |
| 4.3 本实验结果的分析研究 | 第51-53页 |
| 5 小结 | 第53-54页 |
| 结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-58页 |
| 附录 | 第58-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 文献综述 | 第61-68页 |
| 参考文献 | 第65-68页 |
| 作者简历 | 第68页 |
